FKM FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)
- 公司名稱 北京易科泰生態(tài)技術(shù)有限公司
- 品牌 其他品牌
- 型號(hào) FKM
- 產(chǎn)地
- 廠商性質(zhì) 代理商
- 更新時(shí)間 2023/2/27 10:21:06
- 訪問次數(shù) 3675
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土壤與植物生理生態(tài)研究監(jiān)測、環(huán)境氣象監(jiān)測、水文水質(zhì)及地下水監(jiān)測、水土保持研究監(jiān)測、荒漠化監(jiān)測、精準(zhǔn)農(nóng)業(yè)以及動(dòng)物生態(tài)研究等儀器技術(shù)的引進(jìn)推廣和系統(tǒng)集成,并為生態(tài)環(huán)境實(shí)驗(yàn)研究和規(guī)劃設(shè)計(jì)提供技術(shù)方案和分析測量。
產(chǎn)地類別 | 進(jìn)口 | 價(jià)格區(qū)間 | 面議 |
---|---|---|---|
應(yīng)用領(lǐng)域 | 醫(yī)療衛(wèi)生,環(huán)保,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)業(yè) |
FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)是目前功能強(qiáng)大全面的植物顯微熒光研究儀器,是基于FluorCam葉綠素?zé)晒獬上窦夹g(shù)的顯微成像定制系統(tǒng)。它由包含可擴(kuò)展部件的增強(qiáng)顯微鏡、高分辨率CCD相機(jī)、激發(fā)光源組、光譜儀、控溫模塊以及相應(yīng)的控制單元和的工作站與分析軟件組成。它不僅可以進(jìn)行微藻、單個(gè)細(xì)胞、單個(gè)葉綠體乃至基粒-基質(zhì)類囊體片段進(jìn)行Fv/Fm、Kautsky誘導(dǎo)效應(yīng)、熒光淬滅、OJIP快速熒光響應(yīng)曲線、QA再氧化等各種葉綠素?zé)晒饧癕CF多光譜熒光(multicolor fluorescence)成像分析;還能通過激發(fā)光源組進(jìn)行進(jìn)行任意熒光激發(fā)和熒光釋放波段的測量,從而進(jìn)行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等熒光蛋白、熒光染料以及藻青蛋白、藻紅蛋白、藻膽素等藻類*熒光色素的成像分析;更可以利用光譜儀對(duì)各種熒光進(jìn)行光譜分析,區(qū)分各發(fā)色團(tuán)(例如PSI和PSII及各種捕光色素復(fù)合體等)并進(jìn)行深入分析。
FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)使熒光成像技術(shù)真正成為光合作用機(jī)理研究的探針,使科研工作者在藻類和高等植物細(xì)胞與亞細(xì)胞層次深入理解光合作用過程及該過程中發(fā)生的各種變化,為直接研究葉綠體中光合系統(tǒng)的工作機(jī)理提供了為有力的工具。FKM作為藻類/植物表型和基因型顯微研究的雙重利器,得到了學(xué)界的廣泛認(rèn)可并取得了大量的科研成果。
功能特點(diǎn)
•內(nèi)置現(xiàn)今葉綠素?zé)晒庋芯康娜砍绦?,如Fv/Fm、Kautsky誘導(dǎo)效應(yīng)、熒光淬滅、OJIP快速熒光響應(yīng)曲線、QA再氧化等,可獲得70余項(xiàng)參數(shù)。
•配備10倍、20倍、40倍、63倍和100倍生物熒光物鏡,可以清晰觀測到葉綠體及其發(fā)出的熒光。
•激發(fā)光源組中包括紅外光、紅光、藍(lán)光、綠光、白光、紫外光和遠(yuǎn)紅光等,通過紅藍(lán)綠三色光還可以調(diào)出可見光譜中的任何一種色光,能夠研究植物/藻類中任何一種色素分子或發(fā)色團(tuán)。
•可進(jìn)行GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等熒光蛋白、熒光染料的成像分析
•高分辨率光譜儀能夠深入解析各種熒光的光譜圖。
•控溫系統(tǒng)可以保證實(shí)驗(yàn)樣品在同等溫度條件下進(jìn)行測量,提高實(shí)驗(yàn)精度,也可以進(jìn)行高溫/低溫脅迫研究。
應(yīng)用領(lǐng)域
• 微藻、大型藻類/高等植物的單個(gè)細(xì)胞、單個(gè)葉綠體、基粒-基質(zhì)類囊體片段等的顯微結(jié)構(gòu)植物光合生理研究
• 藻類/植物逆境研究
• 生物和非生物脅迫的研究
• 藻類/植物抗脅迫能力及易感性研究
• 突變體篩選及光合機(jī)理研究
• 藻類長勢與產(chǎn)量評(píng)估
• 藻類*色素與光合作用關(guān)系
• 藻類/植物——微生物交互作用研究
• 藻類/植物——原生動(dòng)物交互作用研究
• 基因工程與分子生物學(xué)研究
測量樣品
• 植物活體切片
• 植物表皮
• 植物細(xì)胞
• 綠藻、藍(lán)藻等各種單細(xì)胞和多細(xì)胞微藻
• 葉綠體提取液
• 類囊體提取液
• 含有葉綠體的原生動(dòng)物
工作原理
FKM分析過程中,通過連接在顯微鏡上的激發(fā)光源組和內(nèi)置在6位濾波輪中的一系列濾波器、分光鏡激發(fā)植物樣品中各種發(fā)色團(tuán)的動(dòng)態(tài)熒光。樣品激發(fā)出的熒光經(jīng)顯微鏡放大后進(jìn)行熒光光譜分析和熒光動(dòng)力學(xué)成像分析。SM 9000光譜儀通過光纖與顯微鏡連接,以進(jìn)行激發(fā)熒光光譜分析。安裝在顯微鏡頂部的高分辨率CCD相機(jī)則用于熒光動(dòng)力學(xué)成像分析。全部工作過程通過工作站和控制單元按照預(yù)先設(shè)定好的程序自動(dòng)進(jìn)行。測量過程中,可通過溫控模塊調(diào)控藻類、植物細(xì)胞等實(shí)驗(yàn)樣品的溫度。蠕動(dòng)泵可以實(shí)現(xiàn)培養(yǎng)藻類的連續(xù)測量。
儀器組成
1. 增強(qiáng)顯微鏡
2. 高分辨率CCD相機(jī)
3. 激發(fā)光源組
4. SM 9000光譜儀
5. 主控制單元
6. 工作站及軟件
7. 控溫模塊的控制單元
8. 6位濾波輪
技術(shù)參數(shù)
• 測量參數(shù)
?Fo, Fo’, Fs, Fm, Fm’, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm ,Fv',Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qP,QY, QY_Ln, Rfd, ETR等50多個(gè)葉綠素?zé)晒鈪?shù),每個(gè)參數(shù)均可顯示2維熒光彩色圖像
?OJIP快速熒光曲線:測定分析OJIP曲線與二十幾項(xiàng)相關(guān)參數(shù)包括:Fo、Fj、Fi、P或Fm、Vj、Vi、Mo、Area 、Fix Area、Sm 、Ss 、N(QA還原周轉(zhuǎn)數(shù)量)、Phi¬¬¬_Po 、Psi_o 、Phi_Eo、Phi_Do、Phi_pav、ABS/RC(單位反應(yīng)中心的吸收光量子通量)、TRo/RC(單位反應(yīng)中心初始捕獲光量子通量)、ETo/RC(單位反應(yīng)中心初始電子傳遞光量子通量)、DIo/RC(單位反應(yīng)中心能量散失)、ABS/CS(單位樣品截面的吸收光量子通量)、TRo/CSo、RC/CSx(反應(yīng)中心密度)、PIABS(基于吸收光量子通量的“性能”指數(shù)或稱生存指數(shù))、PIcs(基于截面的“性能”指數(shù)或稱生存指數(shù))等(選配)
?GFP、DAPI、DiBAC4、SYTOX、CTC等熒光蛋白和熒光染料的成像分析(選配)
?QA再氧化動(dòng)力學(xué)曲線(選配)
?Spectrum熒光光譜圖(選配)
•具備完備的自動(dòng)測量程序(protocol),可自由對(duì)自動(dòng)測量程序進(jìn)行編輯
?Fv/Fm:測量參數(shù)包括Fo,F(xiàn)m,F(xiàn)v,QY等
?Kautsky誘導(dǎo)效應(yīng):Fo,F(xiàn)p,F(xiàn)v,F(xiàn)t_Lss,QY,Rfd等熒光參數(shù)
?熒光淬滅分析:Fo,F(xiàn)m,F(xiàn)p,F(xiàn)s,F(xiàn)v,QY,ΦII,NPQ,Qp,Rfd,qL等50多個(gè)參數(shù),2套制式程序
?光響應(yīng)曲線LC:Fo,F(xiàn)m,QY,QY_Ln,ETR等熒光參數(shù)
?Dyes & FPs穩(wěn)態(tài)熒光成像測量
?OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)分析:Mo(OJIP曲線初始斜率)、OJIP固定面積、Sm(對(duì)關(guān)閉所有光反應(yīng)中心所需能量的量度)、QY、PI等26個(gè)參數(shù)(選配)
?QA再氧化動(dòng)力學(xué)(選配)
?Spectrum熒光光譜分析(選配)
•熒光激發(fā)光源:紅外光、紅光、橙光、藍(lán)光、綠光、白光、紫外光等可選,根據(jù)客戶要求定制光源組
•透射光源(選配):白光、遠(yuǎn)紅光
?高分辨率TOMI-2 CCD傳感器:
?逐行掃描CCD
?高圖像分辨率:1360×1024像素
?時(shí)間分辨率:在高圖像分辨率下可達(dá)每秒20幀
?A/D 轉(zhuǎn)換分辨率:16位(65536灰度色階)
?像元尺寸:6.45µm×6.45µm
?運(yùn)行模式:1)動(dòng)態(tài)視頻模式,用于葉綠素?zé)晒鈪?shù)測量;2)快照模式,用于GFP等熒光蛋白和熒光染料測量
?通訊模式:千兆以太網(wǎng)
•顯微鏡:Axio Imager M2,可選配Axio Scope A1簡潔版或Axio Imager Z2高級(jí)版
?物鏡轉(zhuǎn)盤:研究級(jí)7孔自動(dòng)物鏡轉(zhuǎn)盤
?透射光快門
?聚光器 Achr Apl 0.9 H
?6位反光鏡轉(zhuǎn)盤
?雙目鏡筒(100:0/30:70/0:100)
?機(jī)械載物臺(tái):75×50mm,硬膜陽極氧化表面
?樣品架:76×26mm
•物鏡:10倍、20倍、40倍、63倍和100倍生物熒光物鏡(可選)
•6位濾波輪:葉綠素?zé)晒狻FP/SYTOX、DAPI/CTC等
•SM9000光譜儀
?入射狹縫:70µm×1400µm
?光柵:平場型校正
?光譜范圍:200-980nm
?波長精確度:<0.5nm
?再現(xiàn)性:<0.1nm
?溫度漂移:<0.01nm/K
•溫度調(diào)控模塊:溫度調(diào)節(jié)范圍 5℃-70℃,精確度0.1℃
•蠕動(dòng)泵(選配):流速10-5600µl/min,用于藻類連續(xù)培養(yǎng)測量
•FluorCam葉綠素?zé)晒獬上穹治鲕浖δ埽壕週ive(實(shí)況測試)、Protocols(實(shí)驗(yàn)程序選擇定制)、Pre–processing(成像預(yù)處理)、Result(成像分析結(jié)果)等功能菜單
•客戶定制實(shí)驗(yàn)程序協(xié)議(protocols):可設(shè)定時(shí)間(如測量光持續(xù)時(shí)間、光化學(xué)光持續(xù)時(shí)間、測量時(shí)間等)、光強(qiáng)(如不同光質(zhì)光化學(xué)光強(qiáng)度、飽和光閃強(qiáng)度、調(diào)制測量光等),具備實(shí)驗(yàn)程序語言和腳本,用戶也可利用Protocol菜單中的向?qū)С绦蚰0孀杂蓜?chuàng)建新的實(shí)驗(yàn)程序
•自動(dòng)測量分析功能:可設(shè)置一個(gè)實(shí)驗(yàn)程序(Protocol)自動(dòng)無人值守循環(huán)成像測量,重復(fù)次數(shù)及間隔時(shí)間客戶自定義,成像測量數(shù)據(jù)自動(dòng)按時(shí)間日期存入計(jì)算機(jī)(帶時(shí)間戳)
•快照(snapshot)模式:通過快照成像模式,可以自由調(diào)節(jié)光強(qiáng)、快門時(shí)間及靈敏度得到清晰突出的植物樣本穩(wěn)態(tài)熒光和瞬時(shí)熒光圖片
•成像預(yù)處理:程序軟件可自動(dòng)識(shí)別多個(gè)植物樣品或多個(gè)區(qū)域,也可手動(dòng)選擇區(qū)域(Region of interest,ROI)。手動(dòng)選區(qū)的形狀可以是方形、圓形、任意多邊形或扇形。軟件可自動(dòng)測量分析每個(gè)樣品和選定區(qū)域的熒光動(dòng)力學(xué)曲線及相應(yīng)參數(shù),樣品或區(qū)域數(shù)量不受限制(>1000)
•數(shù)據(jù)分析模式:具備“信號(hào)計(jì)算再平均”模式(算數(shù)平均值)和“信號(hào)平均再計(jì)算”模式,在高信噪比的情況下選用“信號(hào)計(jì)算再平均”模式,在低信噪比的情況下選擇“信號(hào)平均再計(jì)算”模式以過濾掉噪音帶來的誤差
•輸出結(jié)果:高時(shí)間解析度熒光動(dòng)態(tài)圖、熒光動(dòng)態(tài)變化視頻、熒光參數(shù)Excel文件、直方圖、不同參數(shù)成像圖、不同ROI的熒光參數(shù)列表等
葉綠素?zé)晒馀c光譜分析結(jié)果
典型應(yīng)用:
產(chǎn)地:捷克
參考文獻(xiàn):
1.Küpper H, et al. 2019. Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging. Plant Physiology 179: 369-381
2.Konert G, et al. 2019. Protein arrangement factor: a new photosynthetic parameter characterizing the organization of thylakoid membrane proteins. Physiologia Plantarum 166: 264-277.
3.Exposito-Rodriguez M, et al. 2017. Photosynthesis-dependent H2O2 transfer from chloroplasts to nuclei provides a high-light signalling mechanism. Nature Communications, 8: 49
4.Higo S, et al. 2017. Application of a pulse-amplitude-modulation (PAM) fluorometer reveals its usefulness and robustness in the prediction of Karenia mikimotoi blooms: A case study in Sasebo Bay, Nagasaki, Japan. Harmful Algae, 61:63-70
5.Jacobs M, et al. 2016. Photonic multilayer structure of Begonia chloroplasts enhances photosynthetic efficiency. Nature Plants, doi:10.1038/nplants.2016.162
6.Andresen E, et al. 2016. Cadmium toxicity investigated at the physiological and biophysical levels under environmentally relevant conditions using the aquatic model plant Ceratophyllum demersum. New Phytol., 210(4):1244-1258
7.Thomas G, et al. 2016. Deficiency and toxicity of nanomolar copper in low irradiance—A physiological and metalloproteomic study in the aquatic plant Ceratophyllum demersum. Aquatic Toxicology, 177:226-236
8.Fujise L, et al. 2014. Moderate Thermal Stress Causes Active and Immediate Expulsion of Photosynthetically Damaged Zooxanthellae (Symbiodinium) from Corals. PLOS ONE, DOI:10.1371/journal.pone.0114321
9.Gorecka M, et al. 2014. Abscisic acid signalling determines susceptibility of bundle sheath cells to photoinhibition in high light-exposed Arabidopsis leaves. Philosophical Transactions of the Royal Society B, 369(1640), DOI: 10.1098/rstb.2013.0234
10.Mishra S, et al. 2014. A different sequence of events than previously reported leads to arsenic-induced damage in Ceratophyllum demersum L. Metallomics, 6: 444-454
11.Ferimazova N, et al. 2013. Regulation of photosynthesis during heterocyst differentiation in Anabaena sp. strain PCC 7120 investigated in vivo at single-cell level by chlorophyll fluorescence kinetic microscopy. Photosynthesis Research, 116(1): 79-91
12.Andresen E, et al. 2013. Effects of Cd & Ni toxicity to Ceratophyllum demersum under environmentally relevant conditions in soft & hard water including a German lake. Aquatic Toxicology. 142–143, 15: 387–402
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