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當(dāng)前位置:上海聯(lián)碩生物科技有限公司>>技術(shù)文章>>涂布平板法的實驗原理與方法
微生物學(xué)實驗中的一種操作方法。由于將含菌材料現(xiàn)加到還較燙的培養(yǎng)基中再倒平板易造成某些熱敏感菌的死亡,而且采用稀釋倒平板法也會使一些嚴(yán)格好氧菌因被固定在瓊脂中間缺乏氧氣而影響其生長,因此在微生物學(xué)研究中更常用的純種分離方法是稀釋涂布平板法。
實驗原理
在稀釋度足夠高的菌液里,聚集在一起的微生物將被分散成單個細胞,從而能在培養(yǎng)基表面形成單個的菌落。
實驗器材
1.活材料:蘇云金芽孢桿菌(Bacillus thuringiensis)菌劑。
2.培養(yǎng)基:牛肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基
3.器材:90ml無菌水、9ml無菌水、無菌平皿、lml無菌移液管、天平、稱樣瓶、記號筆、玻璃刮鏟等。
(提示:10-1為10的負一次方,即0.1;10-2為10的負二次方,即0.01)
第一步:系列稀釋
樣品稀釋液的制備 準(zhǔn)確稱取待測樣品10g,放入裝有90ml無菌水并放有小玻璃珠的250ml三角瓶中,用手或置搖床上振蕩20min,使微生物細胞分散,靜置20-30s,即成10-1稀釋液;再用1ml無菌吸管,吸取10-1稀釋液lml,移入裝有9ml無菌水的試管中,吹吸3次,讓菌液混合均勻,即成10-2稀釋液;再換一支無菌吸管吸取10-2稀釋液1ml,移入裝有9ml無菌水的試管中,也吹吸三次,即成l0-3稀釋液;以此類推,連續(xù)稀釋,制成10-4、10-5、10-6、10-7、10-8、10-9等一系列稀釋菌液。
用稀釋平板計數(shù)時,待測菌稀釋度的選擇應(yīng)根據(jù)樣品確定。樣品中所含待測菌的數(shù)量多時,稀釋度應(yīng)高,反之則低。通常測定細菌菌劑含菌數(shù)時,采用10-7、10-8、10-9稀釋度,測定土壤細菌數(shù)量時,采用10-4、10-5、10-6稀釋度,測定放線菌數(shù)量時,采用l0-3、10-4、10-5稀釋度,測定真菌數(shù)量時,采用10-2、10-3、10-4稀釋度。
第二步:涂步平板
平板接種培養(yǎng) 平板接種培養(yǎng)有混合平板培養(yǎng)法和涂抹平板培養(yǎng)法兩種方法。
(1)混合平板培養(yǎng)法 將無菌平板編上10-7、10-8、10-9號碼,每一號碼設(shè)置三個重復(fù),用無菌吸管按無菌操作要求吸取10-9稀釋液各1ml放入編號10-9的3個平板中,同法吸取10-8稀釋液各lml放入編號10-8的3個平板中,再吸取10-7稀釋液各lml放入編號10-7的3個平板中(由低濃度向高濃度時,吸管可不必更換)。然后在9個平板中分別倒入已融化并冷卻至45-50℃的細菌培養(yǎng)液,輕輕轉(zhuǎn)動平板,使菌液與培養(yǎng)液混合均勻,冷凝后倒置,適溫培養(yǎng)。至長出菌落后即可計數(shù)。
(2)涂抹平板計數(shù)法 涂抹平板計數(shù)法與混合法基本相同,所不同的是先將培養(yǎng)基熔化后趁熱倒入無菌平板中,待凝固后編號,然后用無菌吸管吸取0.1ml菌液對號接種在不同稀釋度編號的瓊脂平板上(每個編號設(shè)三個重復(fù))。再用無菌刮鏟將菌液在平板上涂抹均勻,每個稀釋度用一個滅菌刮鏟,更換稀釋度時需將刮鏟灼燒滅菌。在由低濃度向高濃度涂抹時,也可以不更換刮鏟。將涂抹好的平板平放于桌上20-30min,使菌液滲透入培養(yǎng)基內(nèi),然后將平板倒轉(zhuǎn),保溫培養(yǎng),至長出菌落后即可計數(shù)。
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