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          轉染專題:脂質體轉染的幾個實驗方法

          2013-11-11  閱讀(1124)

          分享:
          摘要: 本實驗介紹了脂質體轉染的幾個方法。
           

          實驗原理
          脂質 體(LR)試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它適用于把DNA 轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中,是目前條件下zui方面的轉染方法之一。轉染率高,優(yōu)于磷酸鈣法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA轉染到各種細胞。
          用LR進行轉染時,首先需要優(yōu)化轉染條件,應找出該批LR對轉染某一特定細胞適合的用量、作用時間等,對每批LR都要做。先要固定一個DNA的量和DNA/LR混合物與細胞相互作用的時間,DNA可從1-5ug和孵育時間6h,開始,按這兩個參數(shù)繪出相應LR需用量的曲線,再選用LR和DNA兩者*的劑量,確定出轉染時間。因LR對細胞有一定的毒性,轉染時間以不超過24h為宜。
          細胞種類:COS-7、BHK、NIH-3T3、Hela和Jurkat等任何一種細胞均可作為受體細胞。
          實驗步驟
          1. 操作步驟(方法一):
             1) 取6孔培養(yǎng)板,向每孔中加入2ml含(1-2) x 105 個細胞的培養(yǎng)基,37℃、18% CO2 培養(yǎng)基40%-60%匯合時。
             2) 轉染液制備:在聚苯乙烯管中制備以下兩液(為轉染1個空細胞所用的量)。
                A液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋DNA使?jié)舛葹?-10ug,終量100ul。
                B液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋LR,使終濃度為2-50ug,終量100ul。
          輕輕混合A液、B液,室溫中置10-15min,稍后會出現(xiàn)微濁現(xiàn)象,但并不妨礙轉染。
             3) 轉染準備:用2ml不含血清培養(yǎng)基漂洗2次,再加入1ml不含血清培養(yǎng)基。
             4) 轉染:把A/B復合物緩緩加入培養(yǎng)基中,搖勻,置37℃溫箱中6-24h,吸除無血清轉染液,換入正常培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。
             5) 其余處理:如觀察、篩選、檢測等與其他轉染法相同。
             6) 注意:轉染時切勿加血清,血清對轉染效率有很大影響。
          2. 快速脂質體轉染法操作步驟(方法二):
             1) 將細胞以5 x 105個/孔接種于6孔板中培養(yǎng)24h,使其達到50%-60%板底面積。
             2) 在試管中配制DNA-脂質體復合物。
                a. 在1ml無血清DMEM中稀釋PSV1-neo質粒DNA或供體DNA。
                b. 旋轉1s,再加入脂質體懸液,旋轉。
                c. 室溫下放置5-10min,使DNA結合在脂質體上。
             3) 棄去細胞中的舊液,用1ml無血清DMEM洗細胞1次后棄去,向每孔中直接加入1mlDNA-脂質體復合物,37℃培養(yǎng)3-5天。
             4) 再于每孔中加入含20%胎牛血清的DMEM,繼續(xù)培養(yǎng)14-24h。
             5) 吸出DMEM-DNA-脂質體混合物加入新鮮含10%胎牛血清的DMEM,2ml/孔,再培養(yǎng)24-48h。
             6) 用細胞刮或消化法收集細胞,以備分析鑒定。
          3. 穩(wěn)定的脂質體轉染法:
             1) 接種細胞同前述,細胞長至50%板底面積可用于轉染。
             2) DNA-脂質體復合物制備轉染細胞同前。
             3) 在每孔中加入1ml含20%胎牛血清的DMEM,37℃培養(yǎng)48h。
             4) 吸出DMEM,用G418選擇性培養(yǎng)基稀釋細胞,使細胞生長 一定時間,篩選轉染克隆,方法參照細胞克隆篩選法進行。
          4. Invitrogen公司的Lipofectamine2000在24孔板轉染單層貼壁細胞。(別的方法可以參考生產(chǎn)商提供的protocol)
             1) 轉染前1天將0.5~2×105細胞接種于24孔培養(yǎng)板,并加入500ul不含抗生素 的*培養(yǎng)基,以保證轉染時細胞匯合達90~95%。
             2) 準備復合物
                a. 將0.8ug DNA稀釋于50ul無血清無抗生素的培養(yǎng)液中輕輕渾勻。
                b. 將2ul Lipofectamine2000稀釋于50ul無血清無抗生素的培養(yǎng)液中,輕輕渾勻,室溫孵育5分。注意:必須在25分內(nèi)進行。
                c. 5分后將它們混合,并輕輕渾勻,室溫孵育20分。
             3) 吸去培養(yǎng)板的培養(yǎng)基,用PBS或無血清培養(yǎng)基()清洗細胞2次。
             4) 將復合物(總體積100ul)加入培養(yǎng)孔,前后搖動培養(yǎng)板使其分布均勻。
             5) 將細胞放入培養(yǎng)箱 孵育4~6h后,可以更換含血清培養(yǎng)液去除復合物(也可不用)。
             6) 24~48h后可以觀察轉入基因表達 情況。
             7) 穩(wěn)定轉染:換含血清培養(yǎng)基24h后將細胞以1:10(或更高比例)傳代,1天后更換篩選培養(yǎng)基篩選。
             8) 優(yōu)化:要保證細胞匯合率達90~95%(比較高);DNA/ Lipofectamine2000比率1:0.5~1:5,一般細胞1:2~3。

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