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          理性闡述qPCR實(shí)驗(yàn)的Ct值的合理范圍

          2017-12-18  閱讀(14853)

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          理性闡述qPCR實(shí)驗(yàn)的Ct值的合理范圍。(附Ct值過大或過小的解決方法)

           

          Ct值是什么?

          Ct值具有什么樣的作用?

          Ct值的正常范圍是多少?

          Ct值太大或者太小的原因?

           

          Ct值是熒光定量PCRzui重要的結(jié)果呈現(xiàn)形式。它被用于計算基因表達(dá)量差異或者基因拷貝數(shù)。那么熒光定量的Ct值多大可被認(rèn)為是合理?如何保證Ct值的有效范圍呢?今天就讓小編來為大家解答這個問題。

          Ct值是什么?

          qPCR擴(kuò)增過程中,擴(kuò)增產(chǎn)物的熒光信號達(dá)到設(shè)定的熒光閾值時的所對應(yīng)的擴(kuò)增循環(huán)數(shù)(Cycle Threshold)。C代表CycleT代表Threshold。簡單講,Ct值就是qPCR中起始模板擴(kuò)增達(dá)到一定產(chǎn)物量時,所對應(yīng)的循環(huán)數(shù)。所謂“一定產(chǎn)物量”后續(xù)作進(jìn)一步解釋。

          Ct值有什么作用?

          1.指數(shù)擴(kuò)增、模板量與Ct值的關(guān)系

          理想情況下,qPCR中的基因經(jīng)過一定的循環(huán)數(shù)被指數(shù)擴(kuò)增而積累,擴(kuò)增循環(huán)數(shù)和產(chǎn)物量之間的關(guān)系是:擴(kuò)增產(chǎn)物量=起始模板量×(1+En)循環(huán)個數(shù)。然而qPCR反應(yīng)并不是一直處于理想情況下,當(dāng)擴(kuò)增產(chǎn)物量達(dá)到“一定產(chǎn)物量”時,此時循環(huán)個數(shù)為Ct值,處于指數(shù)擴(kuò)增時期。Ct值與起始模板量的關(guān)系:模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系。起始模板量濃度越高,Ct值越??;起始模板量濃度越低,Ct值越大。

           

          2.擴(kuò)增曲線、熒光閾值與一定產(chǎn)物量

          qPCR擴(kuò)增產(chǎn)物量是以熒光信號的形式直接呈現(xiàn),也就是擴(kuò)增曲線。在PCR早期,擴(kuò)增處于理想情況下,循環(huán)數(shù)較少,產(chǎn)物積累少,產(chǎn)生熒光的水平不能與熒光本底背景明顯地區(qū)別,之后熒光的產(chǎn)生增加進(jìn)入指數(shù)期。可以在PCR反應(yīng)剛處于指數(shù)期的某一點(diǎn)上來檢測PCR產(chǎn)物的量,以此作為“一定產(chǎn)物量”,并且由此來推斷模板zui初的含量。因此,一定產(chǎn)物量對應(yīng)的熒光信號強(qiáng)度,也就是熒光閾值。

          PCR的后期,擴(kuò)增曲線不再呈現(xiàn)指數(shù)擴(kuò)增,進(jìn)入線性期和平臺期。

           

          3.Ct值的重現(xiàn)性

          PCR循環(huán)在到達(dá)Ct值所在的循環(huán)數(shù)時,剛剛進(jìn)入真正的指數(shù)擴(kuò)增期,此時微小誤差尚未放大,因此Ct值的重現(xiàn)性*,即同一模板不同時間擴(kuò)增或同一時間不同管內(nèi)擴(kuò)增,得到的Ct值是恒定的。

          Ct值的范圍?

          1.擴(kuò)增效率En

          PCR擴(kuò)增效率是指聚合酶把待擴(kuò)增基因轉(zhuǎn)變生成擴(kuò)增子的效率。由1DNA分子轉(zhuǎn)變生成2DNA分子時的擴(kuò)增效率為100%。擴(kuò)增效率常用En表示。為了方便后續(xù)文章的分析,簡要介紹下影響擴(kuò)增效率的因素。

          影響因素

          解釋

          如何判定?

          A.PCR抑制劑

          1.模板RNA中可能含有抑制PCR反應(yīng)的物質(zhì),如蛋白質(zhì)或去污劑等。

          2.反轉(zhuǎn)錄后的cDNA中含有高濃度的模板RNA和反轉(zhuǎn)錄試劑成分,也可能對后續(xù)PCR存在抑制。

          1.可通過測定A260/A280A260/A230比值或RNA電泳,判斷是否存在污染。

          2.反轉(zhuǎn)錄后cDNA是否按照一定比例進(jìn)行稀釋。

          B.引物設(shè)計不合理

          引物不能有效退火

          檢查引物是否存在二聚體或發(fā)夾結(jié)構(gòu)、存在錯配;有時需注意跨內(nèi)含子設(shè)計。

          C.反應(yīng)程序不合適

          1.引物不能有效退火。

          2.DNA聚合酶活性未充分釋放,

          3.長期高溫,DNA聚合酶活性下降。

          1.退火溫度高于引物Tm值。

          2.預(yù)變性時間太短。

          3.反應(yīng)程序各階段時間過長。

          D.試劑未充分混勻或移液誤差

          反應(yīng)體系中,PCR反應(yīng)成分的局部濃度過高或不均勻,導(dǎo)致PCR擴(kuò)增不呈指數(shù)擴(kuò)增。

           

          E.擴(kuò)增子長度

          擴(kuò)增子長度太長,超過300bp,擴(kuò)增效率低。

          檢查擴(kuò)增子長度是否在80bp-300bp之間。

          F.qPCR試劑的影響

          試劑中DNA聚合酶濃度較低或Buffer中離子濃度非*化,導(dǎo)致Taq酶活力未達(dá)zui強(qiáng)。

          標(biāo)準(zhǔn)曲線測定引物擴(kuò)增效率。

           

          2.Ct值的范圍

          Ct值的范圍為15-35。Ct值小于15,認(rèn)為擴(kuò)增在基線期范圍內(nèi),未達(dá)到熒光閾值。理想情況下,Ct值與模板起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系,也就是標(biāo)準(zhǔn)曲線。通過標(biāo)準(zhǔn)曲線,擴(kuò)增效率為100%時,計算出基因單個拷貝數(shù)定量的Ct值在35左右,若大于35,理論上模板起始拷貝數(shù)小于1,可認(rèn)為無意義。

          對于不同的基因Ct范圍,因起始模板量中基因拷貝數(shù)和擴(kuò)增效率不同,需做出該基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算出基因的線性檢測范圍。

           

          3.Ct值的影響因素

          由擴(kuò)增循環(huán)數(shù)和產(chǎn)物量之間的關(guān)系:擴(kuò)增產(chǎn)物量=起始模板量×(1+En)循環(huán)個數(shù),可以看出,在理想條件下,起始模板量和En會對Ct值產(chǎn)生影響。模板質(zhì)量或者擴(kuò)增效率的差異會造成Ct值偏大或過小。

           

          4.Ct值過大或過小

          小翊威逼利誘了我公司技術(shù)部的牛牛們,總結(jié)出Ct值常見的兩類問題的原因和解決方法,以饗讀者。

          問題

          可能的原因

          解決方法

          Ct值過大

          1.模板濃度低或存在PCR抑制物

          2.擴(kuò)增效率低

          1.提高模板濃度;或提高RNAcDNA稀釋比例;或重新制備模板。

          2.降低退火溫度,或選用二步法擴(kuò)增;組分和體系充分混勻;優(yōu)化反應(yīng)程序;或嘗試更換試劑。

          Ct值過小

          1.模板濃度高

          2.NTCNRC存在污染

          3.引物設(shè)計不合適

          1.減少模板RNA量;或更高比例稀釋cDNA。

          2.重新更換所有試劑;或使用UDGase防污染試劑。

          3.優(yōu)化程序,避免非特性擴(kuò)增。

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