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          那些做過(guò)的免疫組化,那些總是困擾的問(wèn)題

          閱讀:8111      發(fā)布時(shí)間:2016-5-11
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           一、石蠟切片和冰凍切片的比較?


          1.要求做冰凍切片的不一定能做石蠟切片。因?yàn)樽魇炃衅瑫r(shí)要高溫烤片,可能會(huì)破壞組織的抗原性,如果組織的抗原性較穩(wěn)定,則可作石蠟切片;但是要求做石蠟切片的,可作冰凍切片。

          2.冰凍切片的優(yōu)點(diǎn)是能夠較好的保存組織的抗原免疫活性,做免疫組化時(shí)不需抗原修復(fù)這一步。缺點(diǎn)是細(xì)胞內(nèi)易形成冰晶而破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu),可能會(huì)使抗原彌散;切片厚度較石蠟的厚,做的片子沒(méi)石蠟的漂亮。當(dāng)你買(mǎi)一抗時(shí),目錄上都寫(xiě)著做什么樣的切片,如果它寫(xiě)著只能做冰凍,就不能做石蠟,如寫(xiě)著兩者都可,那就都能做。

          3.石蠟切片的優(yōu)點(diǎn)是可以保持組織細(xì)胞的形態(tài)結(jié)構(gòu),且容易存放在室溫,而冰凍切片比較麻煩,一定要存在 -80ºC 的低溫冰箱中,尤其是用來(lái)做原位雜交的切片,為了防止 RNA 降解,保存一貫很重要。由于石蠟切片可以切到 4 μm 左右,所以原位雜交探針容易滲透到組織中去,容易成功,而且得到的顏色/形態(tài)都較冰凍切片好。


          二、一抗的選擇要點(diǎn)和技巧是什么?


          1.單克隆和多克隆抗體的選擇。由一種克隆產(chǎn)生的特異性抗體叫做單克隆抗體。單克隆抗體能目標(biāo)明確地與單一的特異抗原決定簇結(jié)合,就像射擊地命中目標(biāo)一樣。另一方面,即使是同一個(gè)抗原決定簇,在機(jī)體內(nèi)也可以由好幾種克隆來(lái)產(chǎn)生抗體,形成好幾種單克隆抗體混雜物,稱(chēng)為多克隆抗體。在抗原抗體反應(yīng)中,一般單克隆抗體特異性強(qiáng),但親和力相對(duì)小,檢測(cè)抗原靈敏度相對(duì)就低;而多克隆抗體特異性稍弱,但抗體的親和力強(qiáng),靈敏度高,但易出現(xiàn)非特異性染色(可以通過(guò)封閉等避免)。

          2.應(yīng)用范圍的選擇。有的一抗只能用于 WB (Western blotting)或免疫組化、免疫熒光、免疫沉淀等;甚表明石蠟切片或冰凍切片。

          3.種屬反應(yīng)性的選擇。這一點(diǎn)很重要,表明這種抗體可能存在種屬差異,且這種抗體適合檢測(cè)哪種種屬動(dòng)物體內(nèi)的抗原。

          4.種屬來(lái)源,一般兔來(lái)源的多是多克??;而小鼠來(lái)源的多是單克隆,但也有另外。根據(jù)此來(lái)源來(lái)選擇相應(yīng)的二抗。

          5.生產(chǎn)廠家的選擇。如 santa Cruz 公司抗體一般 1 ml,價(jià)格 2100 元左右;而chemicon 公司一抗一般 100 μl,價(jià)格 2800 元左右。這兩個(gè)廠家的同一種抗體,它的實(shí)際效價(jià)穩(wěn)定是不同的,我一般用后者抗體做免疫組化效果較好,而前者做 WB 效果還可以。


          三、在什么情況下使用 Triton-X100?

          1.Triton X-100 化學(xué)名稱(chēng)為聚乙二醇辛基苯基醚,是一種去污劑。在免疫組織化學(xué)(10 μ以上厚切片和免疫細(xì)胞化學(xué)中一般用 Triton X-100 作為細(xì)胞通透劑,在膜上打孔。

          2.其作用原理:Triton X-100 可以溶解細(xì)胞膜、細(xì)胞核膜、細(xì)胞器膜上的脂質(zhì)而使抗體及大分子結(jié)構(gòu)的物質(zhì)進(jìn)入胞漿和胞核內(nèi),故在細(xì)胞免疫組化時(shí)尤為推薦使用,這樣抗體就能順利進(jìn)入胞內(nèi)與相應(yīng)抗原結(jié)合。

          3.Triton X-100 既是一種表面活性劑,也有抗氧化作用。


          四、封閉血清的選擇原則是什么?

          1.膜上或切片上有剩余的位點(diǎn)可以非特異性吸附抗體,造成后續(xù)結(jié)果的假陽(yáng)性。

          2.封閉血清一般是和二抗同一來(lái)源的,血清中動(dòng)物自身的抗體,預(yù)先能和組織中有交叉反應(yīng)的位點(diǎn)發(fā)生結(jié)合,否則在后面的步驟中如果和二抗發(fā)生結(jié)合,會(huì)造成背景。

          3.也可以用小牛血清、BSA、羊血清等,但不能與一抗來(lái)源一致。


          五、抗體孵育條件的比較?

          1.一抗孵育溫度有幾種:4ºC、室溫、37ºC,其中 4º效果佳;孵育時(shí)間:這與溫度、抗體濃度有關(guān),一般 37ºC 1-2 h,而 4º隔夜和從冰箱拿出后 37º復(fù)溫 45 min。

          2.二抗一般室溫或 37ºC 30 min - 1h,具體時(shí)間需要摸索。

           

          六、一抗 4℃孵育后為什么要進(jìn)行 37℃復(fù)溫?

          1.一方面,防止切片從 4º直接放入 PBS 易脫片。

          2.另一方面,使抗原抗體結(jié)合更穩(wěn)定。一般不需要,但對(duì)表達(dá)較弱的抗原可能有用,4ºC 37ºC 時(shí)分子運(yùn)動(dòng)方式不同,前者分子碰撞機(jī)率和運(yùn)動(dòng)速度小于后者,后者結(jié)合更快,但敏感性也提高了并易造成非特異染色。

           


          七、DAB 顯色時(shí)間如何把握?

          1.DAB 顯色時(shí)間不是固定的,主要由顯微鏡下控制顯色時(shí)間,到出現(xiàn)淺棕色本底時(shí)即可沖洗。

          2.DAB 顯色時(shí)間很短(如幾秒或幾十秒)就出現(xiàn)很深的棕褐色,這很可能說(shuō)明你的抗體濃度過(guò)高或抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng),需要下調(diào)抗體濃度或縮短抗體孵育時(shí)間。

          3.若很短時(shí)間就出現(xiàn)背景很深,還有可能是你前面的封閉非特異性蛋白不全,需要延長(zhǎng)封閉時(shí)間。

          4.DAB 顯色時(shí)間很長(zhǎng)(如超過(guò)十幾分鐘)才出現(xiàn)陽(yáng)性染色,一方面可能說(shuō)明你的抗體濃度過(guò)低或孵育時(shí)間過(guò)短(好一抗 4ºC 隔夜);另一方面就是封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。


          八、免疫組化結(jié)果如何分析?

          1.陽(yáng)性著色細(xì)胞計(jì)數(shù)法。 40 * 光鏡下,隨機(jī)選擇不重疊的10 個(gè)視野,人工或機(jī)器計(jì)數(shù)陽(yáng)性著色細(xì)胞,每組 3-6 張不同動(dòng)物組織切片,然后進(jìn)行組間比較即可。

          2.灰密度分析法。通過(guò)在不同組別和不同動(dòng)物組織切片上選擇相同區(qū)域、相同條件下用 image j 進(jìn)行灰密度分析,然后進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析即可。

          3.評(píng)分法。通過(guò)在光學(xué)顯微鏡下對(duì)組織切片分別按染色程度(0-3 分為陰性著色、淡黃色、淺褐色、深褐色)、陽(yáng)性范圍進(jìn)行評(píng)分(1-4 分為 0-25%、26-50%、51-75%76-100%),終可以分?jǐn)?shù)相加,再進(jìn)行比較。

          對(duì)于以上這幾種方法,各有利弊,請(qǐng)細(xì)心選擇。要想得到正確結(jié)果的前提是你要做出著色均勻、背景很淺的高質(zhì)量切片。


          九、在什么情況下進(jìn)行組織抗原修復(fù),抗原修復(fù)的條件是什么?


          1.由于組織中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定過(guò)程中,發(fā)生了蛋白之間交聯(lián)及醛基的封閉作用,從而失去抗原性。通過(guò)抗原修復(fù),使得細(xì)胞內(nèi)抗原決定族重新暴露,提高抗原檢測(cè)率。

          2.修復(fù)方法從強(qiáng)到弱一般分為三種,高壓修復(fù)、微波修復(fù)、胰酶修復(fù)。修復(fù)液也分為若干種(具體的可以查閱相關(guān)資料,大量的:中性的、高 pH 的等)。

          3.微波修復(fù),一般用 6 min * 4 次,效果不錯(cuò)。


          十、內(nèi)源性過(guò)氧化物酶的滅活時(shí)間和濃度是什么?

          1.一般 3% 過(guò)氧化氫滅活時(shí)間短點(diǎn),可以10 min 左右;而 0.3% 過(guò)氧化氫則可以適當(dāng)延長(zhǎng)封閉時(shí)間,一般 10-30 min。

          2.用甲醇配置過(guò)氧化氫比雙蒸水或 PBS 好在保護(hù)抗原和固定組織作用,過(guò)氧化氫孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)易引起脫片。

          3.現(xiàn)用現(xiàn)配,配好后 4ºC 避光保存。


          十一、如何才能充分脫蠟?

          1.蠟不溶于水,如果脫蠟不干凈,少許蠟存留于切片上,將會(huì)引起染色不均勻、陽(yáng)性物時(shí)隱時(shí)現(xiàn)、真假難辨、背景染色增加等。為了解決上述的問(wèn)題,切片在染色前必須*脫蠟,目前用于脫蠟的試劑主要是二甲苯,因它脫蠟力強(qiáng),脫蠟時(shí)間較短;

          2.脫蠟的時(shí)間要根據(jù)季節(jié),室溫和試劑的新鮮謀面是在不同。如果在夏天,室溫較高,脫蠟試劑也新鮮,則脫蠟時(shí)間不需很多,3-5 min 就已足夠。如果在冬天,室溫較低,脫蠟試劑也較陳舊,則脫蠟時(shí)間需要延長(zhǎng),10-20 min 或更長(zhǎng)。

          3.當(dāng)天切的切片,燒烤 2 小時(shí)后進(jìn)行染色,切片帶有溫度進(jìn)行脫蠟這將可加速脫蠟的過(guò)程,如果預(yù)先切好烤好的切片,在染色前,還必須對(duì)切片進(jìn)行加溫 10-20 min,然后再行脫蠟,這樣脫蠟速度加快,效果會(huì)更好。

          總之,操作時(shí)應(yīng)根據(jù)不同的季節(jié),不同的室溫,不同的試劑來(lái)決定,脫蠟的時(shí)間,原則上是要*、干凈、*地脫去切片上的蠟。


          十二、如何大限度地降低組織非特異性染色?

           

          1.縮短一抗/二抗孵育時(shí)間、稀釋抗體來(lái)控制。這是重要的一條;

          2.一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,建議用單克隆抗體看看;

          3.內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高(含血細(xì)胞多的組織),需要通過(guò)延長(zhǎng)滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來(lái)降低背景染色;

          4.非特異性組分與抗體結(jié)合,這需要通過(guò)延長(zhǎng)二抗來(lái)源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來(lái)加強(qiáng)封閉效果;

          5.縮短 DAB 孵育時(shí)間或降低 DAB 濃度/過(guò)氧化氫濃度等;

          6.適當(dāng)增加 PBS 沖洗次數(shù)和浸洗時(shí)間,在一抗、二抗或 SP 孵育之后的浸洗尤為重要;

          7.防止標(biāo)本染色過(guò)程中出現(xiàn)干片,這容易增強(qiáng)非特異性著色。


          十三、蘇木素復(fù)染時(shí)間的把握?

           

          1.蘇木素復(fù)染時(shí)間要看當(dāng)時(shí)的室溫、溶液的新舊、目標(biāo)抗原的定位等情況,一般數(shù)秒-數(shù)分鐘。不過(guò)這個(gè)如果染色不理想可以補(bǔ)救的。即:染色深則分化時(shí)間稍長(zhǎng)些即可;染色淺則再置于蘇木素中染色即可。

          2.鹽酸酒精是分化,氨水是返蘭。作用不同。片子復(fù)染完后流水振洗,然后置于鹽酸酒精中數(shù)秒(動(dòng)作一定要快)后拿出流水振洗,在放入氨水中返蘭即可。

          3.如果分化的顏色過(guò)淺,可以復(fù)置于蘇木素中染色。


          十四、PBS 的清洗方式選擇、次數(shù)和時(shí)間的選擇?

           

          1.單獨(dú)沖洗,防止交叉反應(yīng)造成污染。 

          臨床上每天檢測(cè)的病例很多,所用的抗體種類(lèi)及項(xiàng)目也多,如果在加入一抗孵育完后,將它們?cè)谝粋€(gè)缸內(nèi)洗,這樣就會(huì)造成交叉污染,影響后的結(jié)果。正確的做法是單獨(dú)地進(jìn)行沖洗,沖洗的 PBS 為一次性,保證切片沒(méi)有相互交叉污染的機(jī)會(huì)。

          2.溫柔沖洗,防止切片的脫落。

          沖洗切片,取出切片,將 PBS 從上輕輕地沖洗,讓 PBS 自上而下流下來(lái),不要拿起切片將 PBS 對(duì)準(zhǔn)切片沖洗,這樣由于沖出的 PBS 有一定的沖擊力,很容易使切片周邊引起松動(dòng),導(dǎo)致切片的脫落。

          3.沖洗的時(shí)間要足夠,才能*洗去結(jié)合的物質(zhì)。

          沖洗切片有人提出用微振蕩器振染,振下未結(jié)合的各種物,使之不產(chǎn)生背景,此種做法一是浪費(fèi)時(shí)間,二是很容易導(dǎo)致切片的脫落。切片的沖洗據(jù)實(shí)踐認(rèn)為,用一小燒杯柔和地于切片上沖洗,就能*沖洗去未結(jié)合的物質(zhì),無(wú)需附加其它條件,沖洗好于切片上再注入 PBS,持續(xù) 2 min 左右就*足夠了。

          4.PBS pH 和離子強(qiáng)度的使用和要求。

          中性及弱鹼性條件(pH7-8)有利于免疫復(fù)合物的形成,而酸性條件則有利于分解;低離子強(qiáng)度有利于免疫復(fù)合物的形成,而高離子強(qiáng)度則有利于分解。我們目前常用的 PBS pH 7.4-7.6 ,濃度是 0.01 M,根據(jù)本室十幾年來(lái)的使用情況,認(rèn)為該溶液價(jià)格便宜配制方面,使用效果好。

          5.常用試劑的配制和使用。

          在免疫組織化學(xué)的染色過(guò)程中,用得多的試劑就是緩沖液,因?yàn)榍衅谡麄€(gè)染色中,抗體的加、換、切片的沖洗,DAB 的配制都離不開(kāi)緩沖液??梢?jiàn)緩沖液在整個(gè)染色中都起關(guān)鍵的作用,緩沖液的過(guò)酸或偏堿,都將影響染色的結(jié)果。

           

          十五、脫片產(chǎn)生的原因和如何防止脫片?

           

          1.多聚賴(lài)氨酸玻片質(zhì)量的問(wèn)題。我原先是買(mǎi)的,后面補(bǔ)做第二批時(shí)用的病理科老師自己做的片子,要好一點(diǎn)。

          2.組織切的不好,切片機(jī)的問(wèn)題例如比較老的舊的機(jī)器切得厚或者不均勻,或者切片者手法不好等。

          3.組織的問(wèn)題,我用的組織癌癥的很多,越是癌癥組織有壞死之類(lèi)越容易脫。

          4.沒(méi)烤好,時(shí)間短溫度不夠之類(lèi)。

          5.操作的時(shí)候甩的太猛了,有脫片嫌疑的片子好不甩或輕輕甩,用衛(wèi)生紙從邊緣上慢慢吸水。

          6.修復(fù)的問(wèn)題:抗原修復(fù)的時(shí)候高壓時(shí)間過(guò)長(zhǎng)了,或者放進(jìn) 100ºC  的修復(fù)液時(shí)手法不好,咚的一聲就丟進(jìn)去了,這樣超容易脫片。此外,用 EDTA 修復(fù)比檸檬酸容易脫片,但是你要用到 EDTA 的時(shí)候也沒(méi)辦法,只有從另外的問(wèn)題上著手。

          7.此外,一旦見(jiàn)到有組織漂起來(lái)操作就更加要謹(jǐn)慎,用 PBS 的時(shí)候盡量用泡的,不要沖?;旧习堰@些方面都注意到了,能改善的盡量改善,脫片可以減少很多。


          十六、背景染色較深的原因有哪些?

           

          1.抗體濃度過(guò)高:一抗?jié)舛冗^(guò)高是常見(jiàn)的原因之一。解決辦法是,每次使用新抗體前應(yīng)當(dāng)對(duì)其工作濃度進(jìn)行測(cè)試,使每一抗體個(gè)體化,找到適合自己實(shí)驗(yàn)室的理想工作濃度,既使是即用型的抗體也應(yīng)如此,不能只簡(jiǎn)單的按說(shuō)明書(shū)進(jìn)行染色。

          2.抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或溫度較高:解決辦法是,嚴(yán)格執(zhí)行操作規(guī)程,好隨身佩帶報(bào)時(shí)表或報(bào)時(shí)鐘,及時(shí)提醒,避免因遺忘而造成時(shí)間延長(zhǎng)?,F(xiàn)在流行的二步法(Polymer)敏感性很高,要求一抗孵育的時(shí)間不是傳統(tǒng)的 1 h,而是 30 min,因此,要根據(jù)染色結(jié)果進(jìn)行調(diào)整。

          3.DAB 變質(zhì)和顯色時(shí)間太長(zhǎng):DAB 好現(xiàn)用現(xiàn)配,如有沉渣應(yīng)進(jìn)行過(guò)濾后再用。配制好的 DAB 不應(yīng)存放時(shí)間太長(zhǎng),因?yàn)樵跊](méi)有酶的情況下,過(guò)氧化氫也會(huì)游離出氧原子與 DAB 產(chǎn)生反應(yīng)而降低 DAB 的效力,未用完的 DAB 存放在冰箱里幾天后再用這種似乎節(jié)約的辦法是不可取的。DAB 的顯色好在顯微鏡下監(jiān)控,達(dá)到理想的染色程度時(shí)立即終止反應(yīng)。不過(guò)當(dāng)染色片太多時(shí)或用染色機(jī)時(shí),這樣做似乎不現(xiàn)實(shí),但少應(yīng)對(duì)一些新的或少用的抗體顯色時(shí)進(jìn)行監(jiān)控,避免顯色時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。

          4.組織變干:修復(fù)液溢出后未及時(shí)補(bǔ)充液體、染色切片太多、動(dòng)作太慢、忘記滴液、滴液流失等都是造成組織變干的原因。解決的辦法是操作要認(rèn)真仔細(xì),采用 DAKO 筆或 PAP Pen 在組織周?chē)?huà)圈,可以有效的避免液體流失,也能提高操作速度。

          5.切片在緩沖液或修復(fù)液中浸泡時(shí)間太長(zhǎng)(大于24 h):原因上不清楚,但現(xiàn)象存在。有的實(shí)驗(yàn)室喜歡前將切片脫蠟修復(fù),第二天加抗體進(jìn)行免疫組化染色,如果將裝有切片和修復(fù)液的容器放在 4ºC 冰箱隔夜,對(duì)結(jié)果無(wú)明顯影響,如果放在室溫,特別是炎熱的夏天,會(huì)出現(xiàn)背景著色,因此,不可存放時(shí)間太長(zhǎng)。

          6.一抗變質(zhì)、質(zhì)量差的多克隆抗體:注意抗體的有效期,過(guò)期的抗體要么不顯色要么背景著色。用新買(mǎi)的抗體時(shí)好設(shè)立陽(yáng)性對(duì)照和用使用過(guò)的抗體作比較。


          十七、蘇木素復(fù)染后氨水返藍(lán)這一步如何做、濃度多少、時(shí)間多長(zhǎng)?

           

          答:返藍(lán)可以用堿性溶液(PBS/Na2HPO4/淡氨水)或45度溫水、冷水藍(lán)化均可。一般藍(lán)化5~10 min。淡氨水有人用50ml自來(lái)水+三四滴的氫氧化銨。

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