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        1. 上海拜力生物科技有限公司

          蛋白雙向電泳|實驗技術服務

          時間:2015-7-1閱讀:90

          關鍵詞:蛋白雙向電泳|實驗技術服務
          簡介:世界*品牌蛋白雙向電泳|實驗技術服務原裝,質量保證,*。
          蛋白雙向電泳|實驗技術服務——pCzn1質粒+Arctic Express宿主菌低溫表達體系。
          我們具備豐富的蛋白表達設計經(jīng)驗及實驗操作技巧,承諾客戶不成功不收費。在獲得重組蛋白產品的同時,我們也會提供相應的原始數(shù)據(jù)和原始圖片,不需要再額外花費精力重復實驗。另一方面,我們所有的實驗數(shù)據(jù)真實可信,我們提供原始的表達菌株和克隆質粒,客戶可以依據(jù)我們的實驗報告重復我們的實驗結果。
          產品品牌:   http://www.。。com/goodsid/fenleiyi/2868603/1.html    
          測序實驗流程:
          蛋白質組研究的發(fā)展以雙向電泳技術作為核心. 雙向電泳由O’Farrell’s于1975年建立并成功地分離約1 000個E.coli蛋白,并表明蛋白質譜不是穩(wěn)定的,而是隨環(huán)境而變化. 雙向電泳原理簡明,*向進行等電聚焦,蛋白質沿pH梯度分離,至各自的等電點;隨后,再沿垂直的方向進行分子量的分離. 目前,隨著技術的飛速發(fā)展,已能分離出10 000個斑點(spot). 當雙向電泳斑點的全面分析成為現(xiàn)實的時候,蛋白質組的分析變得可行。
          *向等電聚焦 
          ⒈ 從冰箱中取-20℃冷凍保存的水化上樣緩沖液(I)(不含DTT,不含Bio-Lyte)一小管(1ml/管),置室溫溶解。
          ⒉ 在小管中加入0.01g DTT, Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml,充分混勻。
          ⒊ 從小管中取出400ml水化上樣緩沖液,加入100ml樣品,充分混勻。
          ⒋ 從冰箱中取-20℃冷凍保存的IPG預制膠條(17cm pH 4-7),室溫中放置10分鐘。
          ⒌ 沿著聚焦盤或水化盤中槽的邊緣至左而右線性加入樣品。在槽兩端各1cm左右不要加樣,中間的樣品液一定要連貫。注意:不要產生氣泡。否則影響到膠條中蛋白質的分布。
          ⒍ 當所有的蛋白質樣品都已經(jīng)加入到聚焦盤或水化盤中后,用鑷子輕輕的去除預制IPG膠條上的保護層。
          ⒎ 分清膠條的正負極,輕輕地將IPG膠條膠面朝下置于聚焦盤或水化盤中樣品溶液上,使得膠條的正極(標有+)對應于聚焦盤的正極。確保膠條與電極緊密接觸。不要使樣品溶液弄到膠條背面的塑料支撐膜上,因為這些溶液不會被膠條吸收。同樣還要注意不使膠條下面的溶液產生氣泡。如果已經(jīng)產生氣泡,用鑷子輕輕地提起膠條的一端,上下移動膠條,直到氣泡被趕到膠條以外。
          ⒏ 在每根膠條上覆蓋2-3ml礦物油,防止膠條水化過程中液體的蒸發(fā)。需緩慢的加入礦物油,沿著膠條,使礦物油一滴一滴慢慢加在塑料支撐膜上。
          ⒐ 對好正、負極,蓋上蓋子。設置等電聚焦程序。
          ⒑聚焦結束的膠條。立即進行平衡、第二向SDS-PAGE電泳,否則將膠條置于樣品水化盤中,-20℃冰箱保存。
          第二向SDS-PAGE電泳
          ⒈ 配制10%的丙烯酰胺凝膠兩塊。配80ml凝膠溶液,每塊凝膠40ml,將溶液分別注入玻璃板夾層中,上部留1cm的空間,用MilliQ水(沒有milliq的話ddh2o也行,注,水云深浪按)、乙醇或水飽和正丁醇封面,保持膠面平整。聚合30分鐘。一般凝膠與上方液體分層后,表明凝膠已基本聚合。
          ⒉ 待凝膠凝固后,倒去分離膠表面的MilliQ水、乙醇或水飽和正丁醇,用MilliQ水沖洗。
          ⒊ 從-20℃冰箱中取出的膠條,先于室溫放置10分鐘,使其溶解。
          ⒋ 配制膠條平衡緩沖液I。
          5.在桌上先放置干的厚濾紙,聚焦好的膠條膠面朝上放在干的厚濾紙上。將另一份厚濾紙用MilliQ水浸濕,擠去多余水分,然后直接置于膠條上,輕輕吸干膠條上的礦物油及多余樣品。這可以減少凝膠染色時出現(xiàn)的縱條紋。
          ⒍ 將膠條轉移至溶漲盤中,每個槽一根膠條,在有膠條的槽中加入5ml膠條平衡緩沖液I。將樣品水化盤放在水平搖床上緩慢搖晃15分鐘。
          ⒎ 配制膠條平衡緩沖液Ⅱ。
          ⒏ *次平衡結束后,*倒掉或吸掉樣品水化盤中的膠條平衡緩沖液I。并用濾紙吸取多余的平衡液(將膠條豎在濾紙上,以免損失蛋白或損壞凝膠表面)。再加入膠條平衡緩沖液Ⅱ,繼續(xù)在水平搖床上緩慢搖晃15分鐘。
          ⒐ 用濾紙吸去SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝膠上方玻璃板間多余的液體。將處理好的第二向凝膠放在桌面上,長玻璃板在下,短玻璃板朝上,凝膠的頂部對著自己。
          ⒑將瓊脂糖封膠液進行加熱溶解。
          ⒒將10×電泳緩沖液,用量筒稀釋10倍,成1×電泳緩沖液。趕去緩沖液表面的氣泡。
          ⒓第二次平衡結束后,*倒掉或吸掉樣品水化盤中的膠條平衡緩沖液Ⅱ。并用濾紙吸取多余的平衡液(將膠條豎在濾紙上,以免損失蛋白或損壞凝膠表面)。
          ⒔將IPG膠條從樣品水化盤中移出,用鑷子夾住膠條的一端使膠面*浸末在1×電泳緩沖液中。然后將膠條膠面朝上放在凝膠的長玻璃板上。其余膠條同樣操作。
          ⒕將放有膠條的SDS-PAGE凝膠轉移到灌膠架上,短玻璃板一面對著自己。在凝膠的上方加入低熔點瓊脂糖封膠液。
          ⒖用鑷子、壓舌板或是平頭的針頭,輕輕地將膠條向下推,使之與聚丙烯酰胺凝膠膠面*接觸。注意不要在膠條下方產生任何氣泡。在用鑷子、壓舌板或平頭針頭推膠條時,要注意是推動凝膠背面的支撐膜,不要碰到膠面。
          ⒗放置5分鐘,使低熔點瓊脂糖封膠液*凝固。
          ⒘在低熔點瓊脂糖封膠液*凝固后。將凝膠轉移至電泳槽中。
          ⒙在電泳槽加入電泳緩沖液后,接通電源,起始時用的低電流(5mA/gel/17cm)或低電壓,待樣品在*走出IPG膠條,濃縮成一條線后,再加大電流(或電壓)(20-30mA/gel/17cm),待溴酚藍指示劑達到底部邊緣時即可停止電泳。
          ⒚電泳結束后,輕輕撬開兩層玻璃,取出凝膠,并切角以作記號(戴手套,防止污染膠面)。
          ⒛進行染色。

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