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PCR-ELISA原理及操作
PCR-ELISA是一種將PCR性與ELISA高特異性結(jié)合在一起的轉(zhuǎn)基因檢測(cè)方法。利用共價(jià)交聯(lián)在PCR管壁上的寡核苷酸作為固相引物,在Taq酶作用下,以目標(biāo)核酸為模板進(jìn)行擴(kuò)增,產(chǎn)物一部分交聯(lián)在管壁上成為固相產(chǎn)物,一部分游離于液體中成為也想產(chǎn)物。對(duì)于固相產(chǎn)物,可用標(biāo)記探針與之雜交,再用堿性磷酸酯酶標(biāo)記的鏈親合素進(jìn)行ELISA檢測(cè),同時(shí)可通過(guò)凝膠電泳對(duì)液相產(chǎn)物進(jìn)行分析。
EDC在包被過(guò)程中起到橋梁作用,它以共價(jià)鍵的形成與固相引物的磷酸基團(tuán)結(jié)和,激活寡核苷酸。EDC溶于水后極不穩(wěn)定,活化后的寡核苷酸半衰期很短,這個(gè)操作帶來(lái)不便。如果先加寡核苷酸混合物中加入甲基咪唑會(huì)解決不穩(wěn)定的現(xiàn)象,火花的寡核苷酸即使過(guò)ye也不會(huì)影響結(jié)果。EDC極易吸潮,必須干燥貯存于-20℃,分成等份,沒分用于一次包被
EDC的濃度對(duì)包被效果有較大影響,zui適濃度為10mmol/L.5-12.5mml/L之間沒有太大的差異。EDC的濃度增加到16mmol/L時(shí),包被上的寡核苷酸的量急劇下降,增加到100mmol/L后,幾乎檢測(cè)不到引物。
大量實(shí)驗(yàn)證明,*包被條件為10mmol/L的甲基咪唑,10mmol/LEDC,ph7.0,50℃反應(yīng)5h,核酸的濃度一般為100mmol/L,高濃度的核酸只能稍微縮短反應(yīng)時(shí)間而不能提高結(jié)合上的分子的量。包被好的PCR管可在4℃或更低溫度下存放半年以上。
PCR擴(kuò)增 在包被寡核苷酸的管內(nèi)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增和條件因目的片段而異,對(duì)35S啟動(dòng)子和NOS終止子,PCR反應(yīng)體系為:10倍緩沖液5ul,25mmol/L Mg2 4ul,10mmol/LdNTPs 1ul,25umol/L引物11ul,8umol/L引物2(固相引物)1ul,Taq酶2u,加水至50ul。固相引物與液相引物的濃度比值決定了兩種產(chǎn)物的量,1:1利于瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),8:1利于雜交檢測(cè),同時(shí)也適合凝膠電泳分析。35S啟動(dòng)子和NoS終止子的擴(kuò)增條件如下:94℃5min,54℃55s,72℃1min,1個(gè)循環(huán):94℃30s,72℃30s,35個(gè)循環(huán):72℃延伸8min。NPTII的退火溫度為50℃,其他條件同上。
ELISA檢測(cè) 變形后的固相產(chǎn)物在5倍SSC(含0.5%BR)中雜交1h,雜交溫度因探針而異,一般在45-50℃都能得到較好的效果,雜交后用0.5倍SSC,0.1%吐溫-20洗掉非特異性結(jié)合的探針,加入100ulLAP(1:2500)使之與探針上的地gao辛結(jié)合,10mg/mL的PNPP顯色30min后,通過(guò)酶標(biāo)儀讀數(shù)。去掉空白對(duì)照,高于10為陽(yáng)性,低于0.1為陰性。
PCR-ELISA的又定
1 高靈敏度 2 可靠性 3半定量檢測(cè)
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