產(chǎn)品簡介
詳細介紹
豬瘟檢測卡|非洲豬瘟檢測試劑盒廠家
【北京康森非洲豬瘟快速檢測試劑盒主要成分與含量】
組成 | 組 份 | 規(guī) 格 |
A盒 | Buffer A | 25 mL/瓶x1瓶 |
Buffer B | 60 mL/瓶x1瓶 | |
BufferC | 1250 μL/管x2管 | |
DNase-Free吸附柱和收集管 | 50套 | |
B盒 | 熒光PCR反應(yīng)液 | 1000 μL/管x1管 |
Taq酶 | 30 μL/管x1管 | |
陰性對照 | 1000 μL/管x1管 | |
陽性對照 | 1000 μL/管x1管 | |
說明書 | 1份/盒 |
【北京康森非洲豬瘟快速檢測試劑盒用法與判定】
1.樣品處理
血液樣品直接用;
淋巴結(jié)、脾臟、扁桃體樣品,用無菌的剪刀和鑷子剪取待檢樣品2.0 g于研缽中充分研磨,再加10.0 mL PBS(pH 7.2,含1萬單位青霉素和1萬單位鏈霉素)混勻(樣品不足2.0 g按1:5比例加PBS),對處理的待檢樣品置70℃,30 min滅活后,3 000 r/min,4 ℃離心5 min,取上清液,編號備用;血球粉處理同上,只不過省掉研磨步驟。
2.樣品存放
采集或處理好的樣品在2℃~8℃條件下保存應(yīng)不超過24 h;若需長期保存,須放置-80 ℃冰箱,但應(yīng)避免反復(fù)凍融(凍融不超過3次)。
3.操作步驟
3.1 病毒DNA的提取(使用A盒)
(1)待檢樣品、陽性對照和陰性對照的份數(shù)總和用n表示,取n個滅菌的1.5 mL離心管,逐管編號。
(2)每管加入Buffer A 500 L。
(3)每管分別加入已處理的待檢樣品、陽性對照、陰性對照各200 L,充分混勻,室溫放置10分鐘。
(4)取與上述離心管等量的DNase-Free吸附柱和收集管,編號。將離心管中的溶液轉(zhuǎn)移至DNase-Free吸附柱,(為避免堵塞吸附柱,盡量不要吸懸浮雜質(zhì))。
(5)13000 r/min室溫離心30 sec。
(6)棄去收集管液體,將吸附柱放回收集管中。
(7)吸附柱內(nèi)加入600 μL Buffer B,13000 r/min離心30 sec。
(8)棄去收集管液體,將吸附柱放回收集管中。
(9)重復(fù)步驟(7),(8)。
(10)13000 r/min空柱離心2 min,去除殘留液。
(11)將每個吸附柱分別移入新的1.5mL離心管中,向柱*加入50 μL Buffer C,室溫靜置1 min,13000 r/min離心30 sec,離心管中液體即為模板DNA。獲得的DNA溶液,冰上保存?zhèn)溆茫ㄗ⒁馓崛〉腄NA須在2 h內(nèi)進行PCR 擴增,若需長期保存須放置-80 ℃冰箱,但應(yīng)避免反復(fù)凍融)。
3.2 熒光PCR擴增(使用B盒)
(1)從試劑盒中取出熒光PCR反應(yīng)液、Taq酶,室溫融化后,2 000 r/min離心5 sec。設(shè)所需PCR管數(shù)為n(n = 樣本數(shù)+1管陰性對照+1管陽性對照),每個測試反應(yīng)體系需要20 μL 熒光PCR反應(yīng)液和0.5 μL Taq酶。計算好各試劑的使用量,加入一適當(dāng)體積小管中,充分混合均勻后,向每個PCR管中各分裝20 μL。
(2)分別向上述PCR管中加入1.3.1(11)中制備的DNA溶液各5μL,蓋緊管蓋,500 r/min 離心30 sec。
(3)將加樣后的PCR管放入熒光PCR檢測儀內(nèi),作好標記。反應(yīng)參數(shù)設(shè)置:
*階段,預(yù)變性95℃/3 min;第二階段,95℃/15 sec,52℃/10 sec,60℃/35 sec共45個循環(huán)。熒光收集在第二階段每次循環(huán)的60℃延伸時進行。
4.非洲豬瘟快速檢測試劑盒結(jié)果判定
4.1 結(jié)果分析條件的設(shè)定
閾值設(shè)定原則:根據(jù)儀器噪聲情況進行調(diào)整,以閾值線剛好超過陰性對照品擴增曲線的高點為準。對于多通道熒光PCR儀,選定FAM(465-510)檢測通道讀取檢測結(jié)果,ABI儀器選擇FAM無熒光淬滅基團。
4.2 質(zhì)控標準
4.2.1 陰性對照無Ct值并且無擴增曲線。
4.2.2 陽性對照的Ct值應(yīng)小于等于28,并出現(xiàn)典型的擴增曲線。
4.2.3 如陰性和陽性對照不滿足以上條件,此次實驗視為無效。
4.3 結(jié)果判定
4.3.1 陰性:無Ct值,且無特征性擴增曲線,表明樣品為陰性。
4.3.2 陽性:Ct值≤38.0,且出現(xiàn)典型的擴增曲線,表示樣品為陽性。
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