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血涂片是通過特定的方法將血液按一定方向均勻涂開的過程，微觀上使細胞是由球形變?yōu)槠矫嫘位蚪矫嫘纹戒佋谳d玻片上。血涂片的顯微鏡檢查是血液細胞形態(tài)學檢查的基本步驟，特別是對于各種血液病的診斷和鑒別診斷，具有重要價值。 血涂片制備是否合格、染色的好壞直接關系到檢驗結果的質量。

（一）血涂片制備

1. 載玻片的準備

    新載玻片常帶有游離堿質，須用濃度為 lmol/L 的HCl浸泡24h，再用清水*沖洗，干燥后備用。舊載玻片要用含洗滌劑的清水中煮沸20min，洗掉血膜，再用清水反復沖洗，zui后用0.95L/L乙醇浸泡1h，干燥備用。使用載玻片時，不要用手觸及玻片表面，保持玻片清潔、干燥、中性、無油膩。

2.血涂片制作方法

    取血液標本一滴置載玻片的一端，以邊緣平滑的推片一端，從血滴前沿方向接觸血液，使血液沿推片散開，推片與載玻片保持 30～45 度夾角，平穩(wěn)地向前推動，血液即在載玻片上形成薄層血膜(圖1—1)。

圖 2—1 血涂片的制作步驟示意圖

涂片的厚薄與血滴大小、推片與載玻片之間的角度、推片時的速度及血細胞比容有關。血滴大、角度大、速度快則血膜越厚；反之則血膜越薄。

一張良好的血涂片，要求厚薄適宜，頭體尾明顯，細胞分布均勻，血膜邊緣整齊并留有的空隙。

下面是幾種血涂片效果模式圖及形成原因 (圖l—2) 。

圖 2—2 幾種血涂片效果比較

（二）血涂片染色

染色的目的是使細胞的主要結構，如細胞膜、細胞質、細胞核等染上不同的顏色，以便于鏡下觀察識別。

血涂片染色包括兩個過程：固定和染色。固定是將細胞蛋白質和多糖等成分迅速交聯(lián)凝固，以保持細胞原有形態(tài)結構不發(fā)生變化。常用的染色方法有瑞特染色法 (Wright)、姬姆薩染色法(Giemsa)等。

1.瑞特（Wright）染色法

本法的特點是將固定和染色合并在一起進行，手續(xù)簡便，染色時間短，對白細胞特異性顆粒著色較好，但對核的著色略差。

（1）瑞特染料

由酸性染料伊紅和堿性染料美藍組成的復合染料。伊紅為鈉鹽，有色部分為陰離子。美藍為氯鹽，有色部分為陽離子。美藍和伊紅的水溶液混合后，產生一種不溶于水的伊紅化美藍 (ME)中性沉淀，即瑞特染料，溶解于甲醇中，即成為瑞氏染液。甲醇的作用一方面使ME溶解，并解離為M ＋ 和E － ，兩種有色離子可以選擇性地與細胞內不同成分結合。另一方面因其具有強大的脫水作用，可將細胞瞬間固定，蛋白質被沉淀為顆粒狀或者網狀結構，表面積增加，提高對染料的吸附作用，增強染色效果。

（2）緩沖液

pH6.4～6.8的磷酸鹽緩沖液，其作用是使染色環(huán)境維持在弱酸性，達到*的染色效果。

（3）細胞的著色原理

細胞的著色既有化學的親合作用，又有物理的吸附作用。不同的細胞由于其所含化學成分不一樣，化學性質各不相同，所以對染料的親合力也不一樣。

①細胞中的堿性物質與酸性染料伊紅結合染成紅色，因此，該物質又稱為嗜酸性物質。如紅細胞中的血紅蛋白及嗜酸粒細胞中的嗜酸性顆粒等與伊紅結合。

②細胞中的酸性物質可與堿性染料美藍結合而染成藍紫色，該物質又稱嗜堿性物質。如淋巴細胞胞質及嗜堿粒細胞的顆粒為酸性物質，與堿性染料美藍結合。

③中性顆粒呈等電狀態(tài)與伊紅美藍均可結合，染淡紫紅色為中性物質。另外細胞核蛋白主要由脫氧核糖核酸和強堿性的組蛋白等組成，與酸性伊紅結合染成紅色，但因核蛋白中還含有少量的弱酸性物質，與堿性美藍作用染成藍色，因含量太少，藍色反應極弱，故也被染成紫紅色。

④原始紅細胞和早幼紅細胞的胞質含有較多的酸性物質，與美藍親合力強，故染成較濃厚的藍色；隨著細胞的發(fā)育，晚幼紅細胞階段既含有酸性物質，又含有堿性物質（ Hb），既能與堿性染料美藍結合，又能與酸性染料伊紅結合，故染成紅藍色或灰紅色；當紅細胞*成熟，酸性物質*消失后，只與伊紅結合，則染成粉紅色。

圖 2－3 瑞特染色原理示意圖

（ 4）pH對細胞染色的影響

細胞著色對氫離子濃度十分敏感。細胞各種成分均由蛋白質構成，由于蛋白質是兩性電解質，所帶電荷的正負數(shù)量隨溶液 pH值而定。對某一蛋白質而言，如果環(huán)境的pH小于其等電點（PI），則該蛋白質帶正電荷即在酸性環(huán)境中正電荷增多，易與酸性伊紅結合，染色偏紅；相反，當環(huán)境的pH大于PI即在堿性環(huán)境中負電荷增多，則易與美藍結合染色偏藍。因此，要使用清潔中性的載玻片、的甲醇做溶劑和用緩沖液(pH6．4～6．8)來調節(jié)染色時的pH值，達到滿意的染色效果。

（ 5）染色效果分析

正常情況：血膜外觀呈淡粉紅色或琥珀色。顯微鏡下，成熟紅細胞呈粉紅色。白細胞胞質中顆粒清楚，并顯示出各種細胞*的色彩，細胞核染紫紅色，核染色質結構清楚。

染色偏酸：紅細胞和嗜酸粒細胞顆粒偏紅，白細胞核呈淡藍色或不著色。

染色偏堿：所有細胞呈灰藍色，顆粒深暗；嗜酸粒細胞可染成暗褐色，甚至紫黑色或藍色；中性顆粒偏粗，染成紫黑色。

圖 2—4 不同染色效果的細胞比較

2.姬姆薩(Giemsa)染色法

姬姆薩染料由天青和酸性染料伊紅組成的復合染料。染色原理、緩沖液與瑞特染色法大致相同。本法對細胞核結構和寄生蟲著色較好，結構顯示更為清晰，但細胞質和顆粒著色較差。

3. 瑞－姬染色法

瑞特染色液和姬姆薩染色液對細胞進行染色時有各自的顯色特征，前者對細胞漿和顆粒著色較好，后者對對細胞核結構顯示清晰。因此將瑞特染料和姬姆薩染料混合，甲醇溶解后組成瑞－姬染色液能取長補短，優(yōu)勢互補，其中所使用的緩沖液與瑞特染色法相同。用該混合染液對血細胞進行染色，細胞核、細胞漿和細胞內顆粒著色均有上佳表現(xiàn)，著色鮮艷，對比鮮明，是臨床上廣泛使用的方法。

（三）血涂片染色的質量控制

1．載玻片必須非常潔凈，中性，無油脂。不清潔或非中性的載玻片會造成細胞特別是紅細胞形態(tài)發(fā)生改變，導致假性的異常形態(tài)紅細胞出現(xiàn)。非中性的載玻片還會影響染色環(huán)境的pH值，帶油脂的載玻片會使細胞分布不均勻。

2．良好血涂片的“標準”。血膜由厚到薄逐漸過度，血膜的體尾交界部位紅細胞分布均勻，既不重疊又互相緊靠相連。

3. EDTA抗凝血液制備血涂片。由于EDTA能阻止血小板聚集，如需在顯微鏡下觀察血小板形態(tài)時可采用，但EDTA抗凝血有時能引起紅細胞皺縮和白細胞聚集，所以應根據情況恰當選擇。

4. 白細胞較低和需濃縮白細胞的標本處理。為獲得較多白細胞，可將抗凝血適當離心，使密度相同細胞集中并分層，然后取紅細胞層上薄的灰白色層（有核細胞和血小板較集中)涂片、染色。該方法非常適合于白細胞減低患者的白細胞分類計數(shù)及紅斑狼瘡細胞檢查。

5. 血細胞比容與涂片關系。血細胞比容高于正常時，紅細胞較多，血液粘度較高，用較小的角度涂片，可獲得滿意的血膜。相反，血細胞比容低于正常時，血液粘度較低，需用較大角度涂片。

6.新配制的瑞氏染液處置。新配制的瑞氏染液包括瑞－姬染液，pH偏堿，染色效果不太理想，需在室溫放置一段時間，其中美藍逐漸轉變?yōu)樘烨郆。在密封條件下，貯存時間愈久，轉化的天青B愈多，染色效果愈好。

7.染色過深、過淺的處理。染色過深、過淺與血涂片中細胞數(shù)量、血膜厚度、染色時間、染液濃度、pH值密切相關。對于重要的標本可采用先試染的方法，根據試染效果調節(jié)第二次染色方式。糾正染色過深可縮短染色時間或稀釋染液。糾正染色過淺可延長染色時間。如果標本片有限出現(xiàn)了染色過深、過淺的情況，可用如下辦法挽救：染色過深可加少量緩沖液覆蓋血膜部分褪色，在顯微鏡下觀察褪色情況及時終止。染色過淺可重加染色液和緩沖液復染，也要在顯微鏡下觀察及時終止。