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蛋白電泳預(yù)制膠 Tris-Glycine gel是利用自動(dòng)化灌膠技術(shù)生產(chǎn)的一款非常安全、方便、高質(zhì)量的預(yù)制聚acrylamide凝膠，且兼容市場上主流的電泳槽，可直接用于PAGE電泳及Western blot檢測(cè)，節(jié)省大量配膠時(shí)間，電泳時(shí)間，提高實(shí)驗(yàn)效率。

蛋白電泳預(yù)制膠 Tris-Glycine gel

產(chǎn)品描述
　　李記生物的蛋白電泳預(yù)制膠 Tris-Glycine gel是利用自動(dòng)化灌膠技術(shù)生產(chǎn)的一款非常安全、方便、高質(zhì)量的預(yù)制聚acrylamide凝膠，且兼容市場上主流的電泳槽，可直接用于PAGE電泳及Western blot檢測(cè)，節(jié)省大量配膠時(shí)間，電泳時(shí)間，提高實(shí)驗(yàn)效率。
　　本產(chǎn)品可完美替代Thermo XP00100BOX/XP00102BOX/P10202BOX等產(chǎn)品。
保存方法
常溫下，可存放6個(gè)月；4~8℃下，可存放12個(gè)月；請(qǐng)勿置于0℃以下，以免凝膠發(fā)生凍裂。

訂購信息

產(chǎn)品編號(hào)	濃度	孔數(shù)	大上樣量	包裝	分離范圍
AP15L214	4~12%	10孔	60 μL	10片/盒	200~15 KDa
AP15L216	4~12%	15孔	30 μL	10片/盒	200~15 KDa
AP15L224	4~15%	10孔	60 μL	10片/盒	200~10 KDa
AP15L226	4~15%	15孔	30 μL	10片/盒	200~10 KDa
AP15L234	4~20%	10孔	60 μL	10片/盒	200~3.5 KDa
AP15L236	4~20%	15孔	30 μL	10片/盒	200~3.5 KDa
AP15L244	8~16%	10孔	60 μL	10片/盒	200~5 KDa
AP15L246	8~16%	15孔	30 μL	10片/盒	200~5 KDa
AP15L254	8~20%	10孔	60 μL	10片/盒	200~6.5 KDa
AP15L256	8~20%	15孔	30 μL	10片/盒	200~6.5 KDa

*玻璃膠板尺寸：寬×高×厚度為98×84×4.1 mm；凝膠尺寸為：寬×高×厚度為81×74×1.5 mm；濃縮膠：4%，1.5cm。
*凝膠中不含SDS, 可用于變性和非變性電泳。
*均一膠可選濃度：6%、7.5%、8%、10%、12%、15%。
*梯度膠可選濃度：4~12%、4~15%、4~20%、8~16%、8~20%。也可以提供特殊濃度的定制服務(wù)。

使用方法
1.將Tris-Glycine gel預(yù)制膠從包裝袋中取出，固定在電泳槽中。
2.按照電泳儀要求加好內(nèi)外槽電泳緩沖液，緩慢地將梳子拔出。
3.上樣：將處理好的蛋白樣品與loading buffer混合均勻，加熱處理后上樣。
4.電泳：恒壓180 V, 60 min左右，溴酚藍(lán)指示帶電泳至膠板底部，或?qū)嶒?yàn)預(yù)定位置時(shí)，即可結(jié)束電泳。
5.電泳結(jié)束，取出凝膠。用刀在一側(cè)邊硅膠處，沿著兩片玻璃的縫隙切開封膠材料，即可打開玻璃板（請(qǐng)注意安全，使用帶握柄的刀片）

注意事項(xiàng)
1.推薦使用李記生物專門配制的變性Tris-Glycine Running Buffer(Cat.#: AP14L086)或非變性Tris-Glycine Running Buffer (Cat.#: AP14L096)。電泳緩沖液不建議重復(fù)使用，因?yàn)榻?jīng)過電泳之后，緩沖液中的離子強(qiáng)度、緩沖能力都發(fā)生了變化，不能確保電泳效果。
2.如果需要蛋白條帶更加清晰、平直，可降低電壓至120V-150V, 適當(dāng)延長電泳時(shí)間。
3.請(qǐng)參考文末的分離譜圖選擇合適濃度的預(yù)制膠，便于進(jìn)行更好的蛋白電泳條帶分離。
4.該預(yù)制膠可以兼容大部分電泳槽，例如Bio-Rad，北京六一，天能或其它膠板寬度在10 cm的電泳槽。

預(yù)制膠分離圖譜

常見問題分析及解決方案

常見問題	可能原因	建議解決方法
高濃度條帶樣品同時(shí)出現(xiàn)在相鄰泳道	樣品量多或加到相鄰條帶	降低上樣量，如有溢出，使用緩沖液沖洗上樣孔。
	上樣孔破損	移除制孔梳時(shí)加倍小心，如上樣孔破損，換用新凝膠。
	凝膠干縮	打開包裝后，盡快進(jìn)行電泳。
	凝膠干縮	可將凝膠在電泳緩沖液中浸泡一段時(shí)間，待凝膠恢復(fù)形狀后上樣。
蛋白分離效果不佳	樣品含鹽量過高	使用透析、超濾，或稀釋等方法降低鹽濃度。
蛋白分離效果不佳	樣品含鹽量過高	提高電泳緩沖液用量，或使用冰袋對(duì)緩沖液降溫等改善效果。
電泳時(shí)溴酚藍(lán)帶扭曲電泳時(shí)間大幅度延長	內(nèi)槽緩沖液泄露	重新夾一下膠板，防止在電泳過程中內(nèi)槽液面逐步降低。
	上樣孔中有氣泡或殘留凝膠保存緩沖液	上樣前，用移液槍吸取緩沖液輕輕沖洗上樣孔，將氣泡吹走。
	樣品蛋白濃度過高	使用上樣緩沖液稀釋蛋白樣品
	凝膠安裝不當(dāng)，內(nèi)槽漏液	檢查內(nèi)槽密封條，墊片等附件是否安裝恰當(dāng)。
	電壓設(shè)置有誤，或電泳緩沖液使用不當(dāng)	確認(rèn)凝膠安裝位置，重新安裝凝膠。嚴(yán)格按照本說明書提供配方配置電泳緩沖液。
電泳后條帶模糊、變黃	電泳緩沖液PH	使用透析、超濾，或稀釋等方法降低鹽濃度。
	凝膠濃度選擇不當(dāng)	根據(jù)凝膠合適分離范圍選用不同濃度凝膠。對(duì)于小分子蛋白的分離，請(qǐng)選用較高分離膠濃度的預(yù)制膠產(chǎn)品。
	蛋白量超出凝膠分離能力	提高電泳緩沖液用量，或使用冰袋對(duì)緩沖液進(jìn)行降溫。
電泳時(shí)泳道拖尾嚴(yán)重點(diǎn)樣孔樣品滯留明顯	樣品裂解處理不充分，	裂解處理不夠充分。建議降低裂解前的樣品濃度，或增加裂解液的比例，使樣品充分裂解。
	Loading buffer處理不充分。	Loading buffer處理不充分。建議對(duì)裂解后的樣品進(jìn)行稀釋后，再進(jìn)行l(wèi)oading buffer 處理。
	樣品中含有較大顆粒雜志如細(xì)胞碎片、菌體碎片。	高速離心后，取上清液電泳。
電泳帶呈微笑狀(中間凹陷，兩邊突起)	樣品鹽離子濃度或表面活性劑濃度過高	稀釋樣品或?qū)悠愤M(jìn)行透析后，再進(jìn)行l(wèi)oading buffer處理和上樣。

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