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          小鼠胚胎成纖維細胞MEF培養(yǎng)相關(guān)知識總結(jié)

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          小鼠胚胎成纖維細胞的富集

          1、給13-14天的孕鼠注射大約0.5ml阿佛丁。當鼠麻醉后,實施斷頸法處死小鼠。

          2、用70%乙醇擦拭腹部,把皮膚向后拉,暴露出腹膜。用消毒過的工具,剪開腹壁以暴露出子宮角。將子宮角移到10cm的皿里。用10ml不含鈣鎂離子的PBS洗三遍。

          3、用剪刀剪開每一測的胚囊,并將胚胎移到培養(yǎng)皿中。

          4、用兩副鐘表鑷子將胎盤和膜與胚胎分離開,分離后切除內(nèi)臟(所有深色的東西)。將胚胎轉(zhuǎn)移到(有蓋)培養(yǎng)皿中,用10ml不含鈣鎂離子的PBS洗三遍。

          5、用帶有彎鉤的眼科剪將組織剪碎,當你剪的很累以致于不能再剪的時候,加入2ml胰蛋白酶/EDTA繼續(xù)剪。再加入另外5ml胰蛋白酶/EDTA,并在37℃孵育大約20分鐘。此時,返回至步,對下一只鼠進行操作。

          6、執(zhí)行1-4步,到將胚胎置于胰蛋白酶/EDTA中這一步。

          7、吹打胰蛋白酶/EDTA中的胚胎,直到有很少的組織物殘留。將皿放回培養(yǎng)箱再孵育10分鐘。

          8、用20ml培養(yǎng)基以終止胰蛋白酶/EDTA的消化,將皿中的物質(zhì)轉(zhuǎn)移至50ml錐形管中。

          9、混勻管內(nèi)的物質(zhì),加入到含有20ml培養(yǎng)基的T75培養(yǎng)瓶中。每個培養(yǎng)瓶中裝大約3個胚胎。

          10、將這些培養(yǎng)瓶放在培養(yǎng)箱中37℃培養(yǎng)過夜。

          11、將胚胎置于PBS中,并重復(fù)第5步。

          12、第二天更換培養(yǎng)基,以去除碎片和中毒的細胞及其分泌的物質(zhì)。

          13、當培養(yǎng)瓶中的細胞長到80-90%匯合時并仍處于指數(shù)生長期時,是凍存細胞的時期。一般說來,這發(fā)生在準備胚胎的第二天。這可能或早或晚發(fā)生,所以請注意觀察你的培養(yǎng)瓶。

          注釋:

          我們已用CF-1品系的鼠制備了成纖維細胞。

          培養(yǎng)基成分:

          88% DMEM

          10% FBS

          1%  NEAA

          1%   雙抗

          對于新建立的細胞系,要對樣本進行支原體檢測。

          小鼠胚胎成纖維細胞的消化/傳代

          1、移去MEF培養(yǎng)基

          2、用5ml不含鈣鎂離子的PBS洗滌細胞(以去除胰蛋白酶的抑制物)。

          3、每個培養(yǎng)瓶里加入1.5ml的胰蛋白酶/EDTA(0.05%的胰蛋白酶),消化5min。

          4、為了使細胞分散開,輕輕吹打細胞。

          5、每加入1ml的胰蛋白酶/EDTA,加入至少1ml的MEF培養(yǎng)基以終止胰蛋白酶的消化。

          6、將細胞懸液加入到15ml的錐形管中,吹打幾次,使細胞分散為單個的。

          7、在新的T75培養(yǎng)瓶中加入10mlMEF培養(yǎng)基。

          8、將細胞懸液分裝到新的T75培養(yǎng)瓶中,放在37℃培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)。

          注釋:

          MEF培養(yǎng)基成分:

          89% DMEM (Gibco # 12100-046)

          10% FBS (Gibco # 16000-044)

          1%  NEAA (Gibco # 11140-050)

          MEF每傳一代就會生長得更慢些。你次傳代的比例可以是1:5,但是后一次的傳代(第4代或第5代)比例應(yīng)該是1:2。

          小鼠胚胎成纖維細胞的凍存

          重懸培養(yǎng)基:

          80% DMEM

          20% FBS

          1%  NEAA

          凍存培養(yǎng)基:

          60% DMEM

          30% FBS

          20% DMSO

          1、用不含鈣鎂離子的PBS洗一次細胞。

          2、加入胰蛋白酶/EDTA37℃消化大約5min。

          3、將細胞吹打下來。

          4、加入與胰蛋白酶/EDTA等體積的培養(yǎng)基以終止胰蛋白酶的消化。

          5、吹散大塊組織。如果還有大塊組織存在,可將懸液加入到50ml的管中使其沉淀。

          6、取上清液,將其分裝到錐形管中,1000rpm離心5min。

          7、每個凍存瓶中加入0.5ml(凍存液的一半體積)的重懸培養(yǎng)基重懸細胞。

          8、逐滴加入等體積的(0.5ml/瓶)凍存培養(yǎng)基,混勻?,F(xiàn)在DMSO的濃度是10%。

          9、每個凍存瓶中加入1ml的細胞。

          10、迅速將細胞轉(zhuǎn)移到凍存的容器中,-70℃凍存過夜。(細胞不能長時間放置在室溫而含有DMSO的情況下)

          11、第二天將細胞放于液氮中長期保存。

          注釋:

          提前標注好凍存細胞的以下信息:

          細胞系名稱

          傳代的代數(shù)

          凍存細胞的數(shù)目

          日期

          Initials

          注明凍存/解凍形式

          小鼠胚胎成纖維細胞的解凍/復(fù)蘇

          1、將凍存瓶從液氮中取出。

          2、放在37℃水浴中快速解凍,being careful not to immerse the vial above the level of the cap.

          3、當僅還有一點冰晶殘留時,用95%的乙醇消毒凍存瓶的外面,并將其置于hood中。(為什么用95%的乙醇消毒?hood是什么?)

          4、輕輕地上下翻轉(zhuǎn)細胞一次,將它們放入15ml錐形管中。

          5、想管中逐滴加入10ml培養(yǎng)基。這一步操作不能少于兩分鐘。做快了對細胞將是一種打擊,你將得到比其他方法具有更低生活能力的細胞。

          6、1000rpm離心5min。

          7、將細胞重懸于10ml培養(yǎng)基中,然后放入T75培養(yǎng)瓶中。

          8、放入37℃培養(yǎng)箱。

          9、注明凍存/解凍的形式,以更新數(shù)據(jù)。

          網(wǎng)友觀點是:

          1、關(guān)于如何確底胚胎期12.5d~13d的小鼠?希望大家能夠介紹一下自己所采用的方法,集思廣益。我所采用的方法是選擇同一天出生的三對小鼠,到成熟(8~10 w)后,分三周合籠,(每周合籠一對),然后待早合籠的小鼠產(chǎn)崽后,再取另兩個雌鼠的胚胎。不知道這樣行不行,也沒注意別人是怎樣做的。另外問了幾個外科的同學也沒找到可以查出小鼠孕期的儀器。

          2、關(guān)于提取MEF的比較好的protocol

          3、關(guān)于MEF轉(zhuǎn)染時起耐受性如何?這個我以后主要做這些,可能會積累一定的經(jīng)驗,但現(xiàn)在肯定有各位朋友已經(jīng)從事或正在從事著方面的工作,希望能夠分享經(jīng)驗。

          4、關(guān)于其分泌細胞因子能力?我從一些文獻上發(fā)現(xiàn),MEF除了作為胚胎干細胞的飼養(yǎng)層以外,也是研究天然免疫的重要材料,如日本東京大學的 AKIRA的實驗室,大板大學的takashi fujita實驗室就發(fā)了相當多的文章。從這些文獻可以看出,MEF分泌細胞因子能力遠遠強于HEK293等工程細胞,相當于肝實質(zhì)細胞,略低于幾種免疫細胞。但較免疫細胞,我認為有其不可替代的優(yōu)勢:

          (1)其并不是主要發(fā)揮免疫功能的細胞,只有在受到外界刺激時才會應(yīng)答,分泌細胞因子,免疫細胞在不受刺激時也會為了維持穩(wěn)態(tài)而不斷產(chǎn)生細胞因子,即使有嚴格的control 組,但專門的免疫細胞即使是同一種細胞(DC,NK,T)但不同的細胞分泌細胞因子的能力也是參差不齊的。會造成control 相對不一致。

          (2)另一方面,由于這些免疫細胞大部分都是懸浮的,不太容易轉(zhuǎn)染,結(jié)果陽性率也會較低。

          (3)現(xiàn)在的分離MEF的方法很便宜,不復(fù)雜,而分離純的免疫細胞(如NK,DC),需要MACS,F(xiàn)ACS等,這對目前國內(nèi)的實驗室經(jīng)費相對緊張的情況來說,不是很劃算。因此除非是需要研究某一種免疫細胞,如果是為了研究天然免疫或者adaptive immune過程中某中基因,或者蛋白,或者某一信號通路等的作用,MEF 細胞不失為一種選擇。

          網(wǎng)友觀點:

          1、我每次取的是16~18天的胚鼠 個人覺得無礙 我倒更喜歡大一點的胚胎 更好操作一點

          2、我取的是皮膚 然后胰酶4度消化過夜 第二天終止消化 撕掉表皮 留下 減碎 用的100目濾網(wǎng)過濾 這個胰酶消化的時間是個關(guān)鍵 時間長了 細胞容易死 時間少了,表皮不容易揭下來 我有此就是這樣 消化了15個小時 結(jié)果接種下來的細胞不能貼壁 全死了

          3、我用的培養(yǎng)液是DMEM+10%小牛血清 培養(yǎng)液也是關(guān)鍵 因為雖然都是成纖維細胞比較潑辣 但總歸是原代 可能還是比較嬌嫩 我前幾天就是這樣 后來發(fā)現(xiàn)是培養(yǎng)液出的問題 測的PH值都8.3了 細胞不死才怪 畢竟細胞耐酸不耐堿

          4、原代培養(yǎng)的大天敵還是污染

          網(wǎng)友觀點:

          MEF對培養(yǎng)基和血清的要求不高,一般的都行我用過高糖DMEM和D/F-12,生長情況都行,而且看不出什么差別。血清也是以前用幾百塊錢的國產(chǎn)標準胎牛血清也長得也不錯,因為要養(yǎng)干細胞,所以現(xiàn)在換成進口Gibco胎牛的血清(兩千多/500ml),感覺細胞的狀態(tài)確實好了一些。我的血清濃度一般是16.66666%。

          網(wǎng)友觀點:

          細胞沒別的,就是很容易老化,一般我都是1:5~1:3傳代,3代之后細胞就出現(xiàn)衰老了,我感覺年輕增殖能力強的MEF應(yīng)該有著清晰的細胞輪廓,細胞立體效果不錯,在相差顯微鏡下,細胞核清晰,細胞纖長,正在分裂或是剛剛分裂的細胞沒有伸出偽足,但是同樣有著更加明亮的輪廓,與細胞邊緣相比,細胞呈深色(我覺得是透光效果不好)。一般在4×下觀察能看出細胞的狀態(tài),此時能看到細胞呈梭形或是三角形。細胞鋪展很厲害,細胞的透光效果增加,說明開始衰老。衰老的MEF不要做feeder,但是也不是*不好。但是要是做轉(zhuǎn)染或是感染的話,出現(xiàn)衰老的MEF就不行了。所以一般就是3代以內(nèi)做。

          我們用的就是WiCell的protocal養(yǎng),和前面那位戰(zhàn)友發(fā)的差不多。只是我們用1mg/ml Collengase IV消化40min,用什么酶不重要,我覺得重要的就是種盤后的換液。原代2小時不管還有多少米貼都不要,傳代復(fù)蘇后一小時就換。消化的時候也是要舍得,0.05%Trypsin-EDTA(GIBCO),5min消化不下來的也統(tǒng)統(tǒng)不要。因為健康的MEF就是易消化易貼壁。老化以及混雜的其他細胞(神經(jīng)、上皮)就沒那么快了。

          附帶一句,易消化易貼壁是fibroblast的共性。

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