對于島津、安捷倫、Sciex等常見品牌的二手氣質聯用儀，二手液質聯用儀等，我們來詳細談談關于質譜儀常見問題及使用經驗，希望能夠對您有所幫助。
質譜儀常見問題匯總
1、質譜不出峰的可能原因？
答：
1）進樣系統(tǒng)與離子源沒連接或有漏液
2）六通閥漏液
3）霧化氣沒開
4）噴霧電壓沒有
5）離子進入分析器的離子通道堵塞
6）噴霧毛細管堵塞
2、如何根據樣品選擇離子源？
答：可根據分子量的大小、極性。APCI適合小分子，極性小的化合物；ESI適合分析的分子量范圍較大、分子要求帶有一定極性。一般先考慮用ESI分析，如果極性實在太小，才想到用APCI。
3、等度還是梯度洗脫如何選擇？
答：其實只做一兩個化合物，是等度洗脫好，速度快，但也并非越快越好，特別在分析生物樣品時，考慮到基質效應，保留因子控制在2-3左右較好。梯度洗脫適合分析多個結構不同的物質，如化合物與代謝產物一同鑒定的時候，比如苷和苷元的一同測定。另外很多做合成化學的分析實驗室用的也是一通用的梯度洗脫方法，一個方法搞定大部分樣品。一般來說對于組成簡單的樣品可以采用等度洗脫，而對于那些復雜的樣品分離通常需要進行梯度洗脫。
4、氣質和液質系統(tǒng)對比
答：除了采用的分離手段不同（氣相和液相）外主要的區(qū)別在于真空系統(tǒng)和電離方式。氣質的真空系統(tǒng)比較簡單，只要一個小的機械泵和一個分子渦輪泵就可以了。液質的機械泵要比氣質大，需要兩個分子渦輪泵。氣質的電離方式有電子電離（EI）和化學電離（CI）。液質的電離方式有電噴霧電離（ESI）、大氣壓化學電離（APCI）和大氣壓光電離（APPI）。
5、APCI和ESI的不同點？
答：
1）離子產生的方式不同。APCI利用電暈放電離子化，氣相離子化。ESI利用離子蒸發(fā)，液相離子化。
2）能被分析的化合物類型不同。APCI適合弱極性，小分子化合物，且具有一定的揮發(fā)性；ESI 極性化合物和生物大分子。
3）流速不同。ESI一般流速較小，約0.001到0.25 mL/min，APCI 相對較大，約0.2到2 mL/min。
4）多電荷。APCI不能生成一系列多電荷離子，所以不適合分析大分子；ESI 能生成一系列多電荷離子，特別適用于蛋白，多肽類等生物分子。
6、CID和CAD區(qū)別？
答：CID（collision-induced dissociation），碰撞誘導解離。通常在真空接口處調節(jié)電壓發(fā)生CID現象，一般是去除溶劑，如果電壓增大，也會產生碎片離子。這是yi級質譜的原理。CAD（collision-activated dissociation） 碰撞活化解離。 做二級質譜時，選擇的母離子進入Q2后，碰撞活化產生子離子，這個過程稱為 CAD。以API3200譜儀為例，CID指的是Q0里面的誘導碰撞的氣體，CAD指的是Q3里面的誘導碰撞氣體。也就是說，在這里的CID&CAD都是指氮氣。
7、氮氣發(fā)生器該使用嗎？
答：氮氣發(fā)生器的工作原理是分離空氣，電解膜的負極側發(fā)生氧化反應，“吃掉"空氣中的氧化性氣體，在正極側還原，空氣流過電解池后就只剩下氮氣和惰性氣體。故國內發(fā)生器的純度大多標有“相對含氧量"。氮氣的純度和空氣流速、有效分解面的長度、電解電勢的強弱都有關系。這種分離方法也決定了氮氣的純度不可能做的很高。加入電解質的作用就是提高水的導電率，使電化學反應能順利進行。發(fā)生器對質譜的影響有一點常常被忽略，就是發(fā)生器內的開關電源工作時會對電網電壓造成一定的干擾（壓縮機的啟動和停止也會）。
8、串聯質譜如何定量？
答：串聯質譜定量時，是以后面產生的碎片峰（子離子）定量。但是這一子離子是由母離子在碰撞室產生的特征性碎片，所以用MRM定量靈敏度會比用SIM定量好很多。建立方法的步驟是：用一定溶度的標準品溶液（1-10 ug/mL）調諧化合物的yi級質譜條件，找到母離子的更佳質譜條件。然后對母離子進行打碎，優(yōu)化碰撞能量，得到其特征性的子離子。更后利用該質譜條件和該母離子->子離子對進行定量。
9、質量偏差怎么辦？
答：質譜的質量數偏了，說明你的儀器該校正了，一般3個月就要校一次機。一般每個廠家都會隨機帶有校正液。
10、如何更換機械泵油？
答：一般3個月到半年更換一次泵油，可同時停機對儀器進行一次清洗。更換泵油的時候，先開啟振氣閥5-10分鐘，待將泵內沉淀振起后，關閉振氣閥，同時關閉電源。打開泵下的泵油排放閥門，放掉舊油。如果泵油已經很臟，則可取少許新油清洗泵后放掉再注入新油。
11、產生碰裝室離子交互影響（Collision Cell Cross Talk）的原因及消除？
答：多通道掃描（MRM）時，如果兩個離子掃描通道的碎片離子一樣（或類似如相差1-2分子量單位），前一個離子通道掃描結束后，碰裝室里的離子來不及清除，影響下一個離子通道反應的定量（如果色譜分離*則無此影響）。
可能的消除方法：
1）選擇特異的子離子（特別是在用穩(wěn)定同位素內標時）
2）增加離子通道掃描反應之間的時間間隔（如100 ms→300 ms）
3）可設置額外的“無用的離子掃描通道（dummy MRM）"
12、排除色譜柱流失問題的更佳方法是什么？
答：診斷色譜柱是否存在流失問題的方法是第yi次在方法條件下安裝色譜柱時，做一次空白色譜圖，然后將近期的運行和空白運行色譜圖對比。如果在空白運行中產生了很多峰，則色譜柱性能改變，這可能是由于載氣中含有氧氣，也可能是由于樣品殘留。如果有 GC-MS，則低極性色譜柱的典型流失離子（例如 DB/HP-1或5）質/荷比m/z 將為 207、73、281、355 等，大多數為環(huán)硅氧烷。
13、譜圖為什么只有溶劑峰？
答：可能有以下原因
1）進樣針損壞
2）載氣流速太低
3）樣品濃度太低
4）樣品被柱或進樣器襯套吸附
14、質譜基線高是什么原因？
答：質譜的基線其實跟液相的紫外檢測器和熒光檢測器一樣，基線高的原因不外乎內部和外部的原因。
1）選擇的流動相在質譜的響應比較高，比如水相比較多的時候，噪音比較大些；還有如果鹽含量比較大的時候，噪音更大些。
2）檢測器的靈敏度越高的時候，噪音應該越高。如果質譜的污染比較嚴重時，基線肯定比較高。比如離子阱檢測器，用得久了，阱中的離子就會增多，一方面降低了質譜的靈敏度，另一方面增加了基線噪音。
3）質譜的基線很多時候還跟你選擇的離子寬度有關。比如作選擇離子掃描的時候，基線就低些。作選擇反應掃描的時候，離子寬度不要選得太寬，太寬噪音就高些。
4）多級質譜一般做二級或三級質譜，基線噪音就低很多。
質譜相關的使用經驗
1）不用直接進樣（容易污染離子源）。
2）做聯用時應分流（縮短分析時間、延長質量分析器壽命）。
3）應使用在線切換閥，將每個樣品的前后1－2分鐘的流動相切入廢液（避免樣品中的鹽進入質譜。做Sequence時可以把平衡柱子的流動相切入廢液）。
4）開始聯用前，直接運行質譜數分鐘，可以先將溫度（毛細管溫度和離子源溫度（APCI））加熱到預設定值。
5）待機時將切換閥置于waste，避免剛開液相時將流動相打入離子源。
6）關機前毛細管的溫度先降下來，穩(wěn)定一段時間后再關閉電源，避免風扇停止轉動后毛細管外圍的熱量向里擴散，容易引起內部線路及電子元器件老化加速。
7）如果用的是鋼瓶而且天天做樣的話，可將兩個鋼瓶并聯。
8）做定量時注意離子源噴針的具體位置，否則可能會影響標準曲線。
9）如果是負離子檢測的話，可以向流動相中加入少量異丙醇。
10）理論上液質聯用禁止使用任何不揮發(fā)性的緩沖鹽。如果需要，盡量使用諸如乙酸氨等揮發(fā)性鹽，濃度不要超過20mmol/L。對于不揮發(fā)性的緩沖鹽，如果你的儀器有吹掃捕集的話也可使用，但一定要小心。萬不得已也不要用，首先有不揮發(fā)鹽是得不到好的離子流的，其次鹽留在質譜中很難除掉，除非停機清洗，不然一直會影響其他樣品的分析?？梢哉屹|譜友好的條件來做液質聯機，例如色譜條件為20mM磷酸鹽的水/乙腈流動相，做液質聯機的時候就可以用醋酸銨代替，然后用醋酸調節(jié)pH值與磷酸鹽的一致即可。除了難揮發(fā)的鹽，三乙胺、表面活性劑、還有高濃度（>0.5%）的TFA，都對質譜不好，液質聯用的流動相中應該避免。
11）需要使用酸的情況下可以用甲酸、乙酸，三氟*酸可以用，但能用甲酸或乙酸時就別用TFA。
12）胺類物質做ESI質譜時要注意進樣量要少，因為很容易離子化，不易沖洗干凈，會影響后面樣品的測定。像三乙胺在液質聯用時不能用于調節(jié)流動相pH值。若不慎引入三乙胺，在正離子檢測時總會出現很強的102峰。
13）酸性物質適合做負離子檢測，所以流動相偏堿性較合適，促使其解離，堿性物質適合做正離子檢測，流動相中適當的加入酸，促使其形成正離子，流動相中適當加一些醋酸鈉（或者醋酸銨），可形成加鈉的正離子或者加銨的正離子。
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