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          賽默飛色譜及質(zhì)譜

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          全新Velocity LFQ DIA定量蛋白組方案發(fā)布

          閱讀:389      發(fā)布時(shí)間:2023-4-7
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          今天的蛋白組學(xué)研究中,研究人員們?cè)谵D(zhuǎn)化研究,生物標(biāo)志物發(fā)現(xiàn),甚至單細(xì)胞分析等過(guò)程中,不止是追求簡(jiǎn)單的鑒定,更多的需要獲取準(zhǔn)確可靠的定量信息,用以理解生物學(xué)問(wèn)題。 他們需要使用精確的定量檢測(cè)方法來(lái)表征生物系統(tǒng)之間的差異,對(duì)大量樣本進(jìn)行高置信度、高通量的表征,驗(yàn)證生物學(xué)假說(shuō)。

          在剛結(jié)束的USHUPO中,賽默飛正式推出了全新的Velocity LFQ DIA 工作流程。 該平臺(tái)基于Thermo Scientific Orbitrap 超高分辨質(zhì)譜儀、Thermo Scientific Vanquish NEO UHPLC 系統(tǒng)以及高效的 Thermo Scientific µPAC UHPLC 色譜柱技術(shù),具有優(yōu)異的定量性能,蛋白組深度覆蓋,并可輕松實(shí)現(xiàn)高通量分析,匹配今天研究人員們對(duì)定量蛋白組學(xué)研究的需求。 下面就由小編給大家介紹該平臺(tái)的工作流程,并展示其在定量表征、蛋白組覆蓋度和方法通量中的性能。

          Workflow

          Velocity LFQ DIA 工作流程

          Velocity LFQ DIA 工作流程組成如圖1 所示,包括Vanquish Neo UHPLC 系統(tǒng)和µPAC Neo UHPLC 色譜柱用于色譜分離,Easy-Spray 納升離子源和 Orbitrap Exploris 240/480 用于質(zhì)譜數(shù)據(jù)采集,Spectronaut軟件用于數(shù)據(jù)分析。


          1. Velocity LFQ DIA 工作流程示意圖

          (點(diǎn)擊查看大圖)

          色譜分離:

          大隊(duì)列研究中需要有穩(wěn)健的色譜設(shè)置(分離技術(shù)、色譜柱等),確保系統(tǒng)長(zhǎng)期穩(wěn)定運(yùn)行。 Vanquish Neo UHPLC 系統(tǒng)可實(shí)現(xiàn)高重現(xiàn)性,并可進(jìn)行多種類型的 LC-MS 實(shí)驗(yàn)。 新的色譜分離技術(shù)同樣也可提高系統(tǒng)穩(wěn)健性,例如基于微陣列的 µPAC Neo 色譜柱,可提高分析靈敏度和保留時(shí)間穩(wěn)定性 [1] 。

          質(zhì)譜分析:

          除了穩(wěn)健性和重復(fù)性之外,可靠的鑒定和定量在蛋白組學(xué)研究中十分重要。 Orbitrap 技術(shù)可提供高質(zhì)量精度以及高分辨率,是復(fù)雜 DIA 掃描中可靠鑒定,以及準(zhǔn)確、精確檢測(cè)并分辨離子類型的關(guān)鍵因素。

          數(shù)據(jù)分析:

          DIA譜圖中為混合母離子碎裂后所得的混合子離子譜圖,通常需要使用譜圖庫(kù)方法進(jìn)行解析。 但是,隨著數(shù)據(jù)分析軟件(例如,使用機(jī)器學(xué)習(xí)方法模擬預(yù)測(cè)獲得高質(zhì)量的譜圖庫(kù))的發(fā)展,無(wú)需譜圖庫(kù)的方法成為了節(jié)約時(shí)間和成本的一種選擇。

          Key Words

          Velocity LFQ DIA 工作流程三個(gè)關(guān)鍵詞:

          定量、覆蓋度、通量


          為了深入展示 Velocity LFQ DIA的性能,我們建立一個(gè)穩(wěn)健、高重現(xiàn)性的工作流程,可實(shí)現(xiàn)復(fù)雜樣品中蛋白的準(zhǔn)確鑒定和定量。 其中使用了兩個(gè)不同的混合樣品,包括兩種蛋白組和三種蛋白組混合樣品(圖2),質(zhì)譜數(shù)據(jù)采集使用OE240質(zhì)譜儀。


          2. Velocity LFQ DIA 工作流程性能展示所使用的的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)。 A,兩種蛋白組混合樣本,包括高含量的人類肽段背景(800 ng Hela 酶解肽段),低到中含量的 Ecoli肽段,比值為1:2:4:8; B,三種蛋白組混合樣本,中等含量的人類肽段背景(325 ng Hela 酶解肽段),以及酵母和Ecoli肽段,比值分別為1:0.51:4。 這些混合樣本分別模擬生物樣本中的上調(diào)和下調(diào)蛋白表達(dá)情況。 (點(diǎn)擊查看大圖)

          01

          出色的定量性能

          分別對(duì)上述兩種樣本進(jìn)行30minLC-MS采樣,數(shù)據(jù)采用Spectronaut16,directDIA的方式進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,肽段和蛋白的FDR均小于1%。

          Ecolihela的混合樣本中,ecoli蛋白在4個(gè)樣本中的3個(gè)不同比值均十分接近理論比值,且所有數(shù)據(jù)點(diǎn)在中位數(shù)附近分布很窄,展示了Velocity LFQ DIA工作流程的高定量準(zhǔn)確性和精密度(圖3A)。 此外,技術(shù)重復(fù)間肽段的 CV 值均小于 7%(圖3B),說(shuō)明該工作流程具有高定量精密度。


          3. 工作流程的定量準(zhǔn)確性和精密度展示,使用兩個(gè)蛋白組混合樣本。 A,Ecoli蛋白三個(gè)不同比值下的實(shí)際比值,以箱型圖展示,橙色虛線為理論比值; B,4個(gè)不同比例下肽段豐度CV的小提琴圖。 (點(diǎn)擊查看大圖)

          同時(shí),使用Velocity LFQ DIA工作流程可獲得約5個(gè)數(shù)量級(jí)的人類蛋白動(dòng)態(tài)范圍(圖4A),有助于低豐度蛋白的發(fā)現(xiàn)。 在高含量的hela肽段背景下,使用該工作流程可發(fā)現(xiàn)很多細(xì)菌體內(nèi)的重要蛋白,包括與轉(zhuǎn)錄翻譯相關(guān),以及人類干擾素誘導(dǎo)相關(guān)的ecoli蛋白。 另外,選取了Ecoli中十個(gè)豐度最低的蛋白,發(fā)現(xiàn)它們?cè)诓煌瑯悠烽g的實(shí)際比值依然十分接近理論比值(圖4B),說(shuō)明該工作流程即使在低豐度蛋白情況下仍可獲得高定量準(zhǔn)確性。


          4. A,兩個(gè)蛋白組混合樣本的蛋白豐度分布; B,Ecoli中十個(gè)豐度最低蛋白的實(shí)際比值與理論比值偏差 (點(diǎn)擊查看大圖)

          在三個(gè)蛋白組混合樣本中,Velocity LFQ DIA工作流程同樣展示了出色的定量性能。 實(shí)際比值與理論比值之前偏差<2%。 可定量約3000個(gè)人類蛋白,接近500個(gè)Ecoli蛋白(圖5A)。 樣本AB的肽段豐度展現(xiàn)了與比值相一致的線性斜率,以及與物種相關(guān)的整體豐度范圍(圖5B)。


          5. 工作流程的定量性能展示,使用三個(gè)蛋白組混合樣本。 A,三個(gè)蛋白組不同比值下的實(shí)際比值,以箱型圖展示,橙色虛線為理論比值; B,樣本AB的肽段豐度相關(guān)性。 (點(diǎn)擊查看大圖)

          02

          深度蛋白組覆蓋

          使用Spectronaut16directDIA方法分析兩個(gè)蛋白組樣品,在不損失定量性能的同時(shí),可獲得深度蛋白組覆蓋。 然后使用第三方軟件DIA-NN [2] 分析相同的數(shù)據(jù)集,可獲得與sp16類似的結(jié)果。 當(dāng)使用Spectronaut17軟件時(shí),改善的directDIA+方法可提高30%的母離子鑒定,及10%的蛋白鑒定(圖6),30min梯度內(nèi),不使用譜圖庫(kù)可獲得接近7000個(gè)蛋白鑒定。 這表明Velocity LFQ DIA工作流程不僅可獲得出色的定量性能,也可實(shí)現(xiàn)深度蛋白組覆蓋,此外也說(shuō)明了不使用譜圖庫(kù)可作為一種有效的DIA數(shù)據(jù)分析方法。 如果想進(jìn)一步提高蛋白組覆蓋深度,也可通過(guò)建立合適譜圖庫(kù)的方法實(shí)現(xiàn)。


          6. 使用library free方法分析兩個(gè)蛋白組樣品可實(shí)現(xiàn)深度蛋白組覆蓋。 柱狀圖比較了三個(gè)不同的軟件(或版本)所得的蛋白和母離子數(shù)目,FDR<1%。 (點(diǎn)擊查看大圖)

          03

          高通量流程

          在上述所展示的Velocity LFQ DIA工作流程中,有效梯度為30min,實(shí)際時(shí)長(zhǎng)為每針39min,可提供每天分析 36個(gè)樣品的通量。 另外,在一些大隊(duì)列研究中,研究人員需要更高的分析通量。 在Velocity LFQ DIA工作流程中使用了Vanquish Neo液相,其使用靈活,且經(jīng)過(guò)優(yōu)化樣品吸取、上樣、色譜柱清洗和平衡等流程,可有效提高質(zhì)譜利用率 [3] ,可方便研究人員根據(jù)項(xiàng)目需求,進(jìn)一步提高樣品通量。

          04

          工作流程穩(wěn)健性

          為了驗(yàn)證Velocity LFQ DIA工作流程的穩(wěn)健性,從一個(gè)持續(xù)兩個(gè)月時(shí)間(使用同一根色譜柱)的項(xiàng)目中選取其中的一部分?jǐn)?shù)據(jù)作為展示。 采用 200 ng Hela肽段,DDA實(shí)驗(yàn)作為系統(tǒng)性能的 QC,在兩個(gè)月內(nèi)間歇運(yùn)行,梯度為67min,結(jié)果如圖7所示。 由結(jié)果可知,肽段和蛋白的鑒定數(shù)字在整個(gè)500小時(shí)的項(xiàng)目中(總上樣量約為130 µg)保持一致(鑒定數(shù)字變化在5%以內(nèi))。 這說(shuō)明了色譜柱,色譜分離以及質(zhì)譜的穩(wěn)健性,這對(duì)大隊(duì)列研究十分重要,是獲得良好數(shù)據(jù)的基礎(chǔ)。


          7. 兩個(gè)月的使用時(shí)間內(nèi),肽段和蛋白鑒定的重現(xiàn)性。 在整個(gè)實(shí)驗(yàn)周期中,間歇運(yùn)行DDA QC實(shí)驗(yàn),數(shù)據(jù)分析使用CHIMERYS算法。 (點(diǎn)擊查看大圖)

          小結(jié)

          Velocity LFQ DIA工作流程結(jié)合了 Vanquish Neo 系統(tǒng),µPAC Neo色譜柱以及 Orbitrap 超高分辨質(zhì)譜儀,是高通量非標(biāo)蛋白組DIA鑒定和定量的一種理想工作流程。

          采用30min梯度的OE240方法展示了該工作流程的主要性能特點(diǎn): 出色的定量深性能、蛋白組深度覆蓋和分析高通量。

          Velocity LFQ DIA工作流程適用于需要高通量、穩(wěn)健性、高準(zhǔn)確性精密度定量性能和深度蛋白組覆蓋的定量蛋白組學(xué)研究。


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