磁珠是高通量測序過程*產(chǎn)品,通過磁顆?;钚曰鶊F(tuán)在一定條件下可與核酸結(jié)合和解離的原理,將樣本中目的片段分離??蓪崿F(xiàn)對核酸樣本的高通量自動化操作,廣泛應(yīng)用于基因測序以及分子診斷領(lǐng)域。
背景篇
磁珠的發(fā)明構(gòu)想初來自于挪威科技大學(xué)的化學(xué)家John Ugelstad,他在1976年以聚苯乙烯為主要材料,制作出均勻磁化的球體粒子。1979年Vogelstein等報道在高濃度典化鈉存在的條件下,玻璃粉末作為吸附劑用于從瓊脂糖凝膠中提取DNA片段,而后基于硅膠和其他具有親水性表面載體的固相核酸純化技術(shù)廣泛發(fā)展起來。而基于磁性微粒的核酸純化方法就是其中的一種。
結(jié)構(gòu)篇
雖然到目前為止納米級別的磁珠各式各樣,表面性質(zhì)不同,分離的原理也不盡相同,但其材料組成和基本的結(jié)構(gòu)并無太大的差異。基礎(chǔ)結(jié)構(gòu)分為三層,內(nèi)層的是聚苯乙烯,第二層包裹磁性物質(zhì)(通常是Fe3O4),外層是修飾的官能團(tuán)(如羧基)。其中官能團(tuán)能與核酸結(jié)合,表面基團(tuán)不同,下游的應(yīng)用也不盡相同,如核酸提取,純化,生物素捕獲等。
圖 磁珠結(jié)構(gòu)示意圖
原理篇
商業(yè)化磁珠產(chǎn)品體系一般包含:磁珠、聚乙二醇(PEG)、鹽離子等?;赟PRI(Solid Phase Reversible Immobilization )技術(shù), DNA在一定濃度的PEG存在條件下,NaCl或MgCl2促進(jìn)條件下,DNA分子構(gòu)象會發(fā)生急劇變化,會暴露出磷酸骨架上大量的帶負(fù)電荷的磷酸基團(tuán),與表面帶負(fù)電荷的羧基磁珠結(jié)合。目前認(rèn)為這種負(fù)負(fù)電荷間的作用是由于帶正電荷的鹽離子的作用(如Na+)。帶負(fù)電磷酸基團(tuán)借由解離的鹽離子(如Na+)與羧基形成離子橋,使DNA被特異性吸附到羧基磁珠表面。利用磁珠的磁性,可通過外加磁場進(jìn)行收集洗脫。
圖 磁珠吸附DNA原理示意圖
操作篇
受益于高通量測序技術(shù)的發(fā)展,磁珠也憑借其高通量,適用于自動化的特點備受推崇,廣泛用于NGS文庫構(gòu)建中DNA純化/雙輪分選(片篩)。
DNA純化的目的在于去除不想要的片段,由于磁珠優(yōu)先吸附大片段,因而可通過一定比例的磁珠吸附特定大小以上的片段,丟棄上清(去除非目標(biāo)片段)后將磁珠吸附的DNA洗脫回收。常用于小片段如接頭二聚體/引物二聚體的去除。
圖 DNA純化操作示意圖
DNA雙輪分選(片篩)目的在于從片段化DNA中選擇特定區(qū)域的DNA片段大小。由于磁珠優(yōu)先吸附大片段,因而需通過兩輪磁珠操作進(jìn)行分選。以分選450-550 bp的片段范圍為例:首先輪磁珠吸附550 bp以上片段,此時棄磁珠留上清,則上清中片段為550 bp以下的片段。第二輪取磁珠吸附450 bp以上(550 bp以下)磁珠,此時棄上清,再將磁珠上的目的片段洗脫回收。常用于NGS文庫構(gòu)建片段分選(片篩)。
圖 DNA雙輪分選操作示意圖
結(jié)果分析篇
1. 磁珠回收效率
DNA樣本經(jīng)磁珠純化后會有部分樣本的損失,磁珠回收效率可評估磁珠的回收能力。具體可通過計算得出:回收效率=(純化后的DNA質(zhì)量/Input DNA質(zhì)量)×100%。
以下表為例,相同的比例條件下:測試人1測試A樣本回收效率=153.25/169.5=90.41%,同理可計算其他樣本的回收效率。
表 磁珠回收效率計算
測試人 | 樣本編號 | 投入量(ng) | 純化后總量(ng) | 回收率(%) | 平均回收效率(%) |
測試人1 (1.8×) | A | 169.5 | 153.25 | 90.41 | 90.41 |
B | 159.75 | 94.25 | 94.5 | ||
C | 162 | 95.58 | |||
D | 158.75 | 93.66 | |||
測試人2 (1.8×) | A | 169.5 | 154.5 | 91.15 | 91.15 |
B | 155 | 91.45 | 91.94 | ||
C | 154.25 | 91 | |||
D | 158.25 | 93.36 |
【注】:磁珠測試數(shù)據(jù)來源于上海某生物公司, 表格中A為AMPure XP磁珠;B、C、D分別是翊圣磁珠三個不同批次。
2. 磁珠分選精度
由于二代測序段短讀長的局限性,因而終的NGS文庫需滿足一定的長度要求。因而NGS建庫中可能會分選特定長度區(qū)間的片段,滿足上機(jī)需求。分選精度則是評估不同的磁珠投入比例分選得到的片段大小。一般以Agilent 2100儀器檢測。
在特定磁珠比例(0.45×/0.15×)條件下,不同樣本分選后片段分布范圍集中在同一位置。較好的分選效果圖應(yīng)該是頂部窄而圓潤的獨峰。
【注】:數(shù)據(jù)結(jié)果來源于上海某生物公司。值得注意的是:不同廠家磁珠buffer的不同,導(dǎo)致相同比例條件下分選得到的片段范圍也不一致,使用前請按照對應(yīng)的磁珠說明書選擇合適的分選比例進(jìn)行操作。
注意事項篇
1. 磁珠使用前需平衡至室溫,否則影響實驗效果(PEG分離效果易受pH、溫度等影響);
2. 用于磁珠洗脫的80%無水乙醇需現(xiàn)用現(xiàn)配;
3. 長度分選時建議初始體積≥100 μL,不足時請用超純水補(bǔ)齊(樣品體積太小,將導(dǎo)致移液誤差增大,進(jìn)而影響分選的準(zhǔn)確性);
4. 磁珠分選時特別注意輪分選后棄含大片段的磁珠,第二輪棄含小片段的上清;
5. 輪分選轉(zhuǎn)移上清時,避免吸到磁珠,引起大片段殘留;
6. 分選/純化產(chǎn)物如需長時間存放請用TE buffer洗脫保存。
FAQ篇
看起來很簡單的純化/分選實驗,卻在實際實驗中有各種意外的情況。那關(guān)于產(chǎn)品選擇以及使用方面我們實際操作中有什么需要注意的事項呢?
產(chǎn)品應(yīng)用:
1. 磁珠可以吸附ssDNA嗎?
A:可以回收單鏈DNA,具體性能沒有測試過。附圖是Beckman磁珠回收單鏈DNA的數(shù)據(jù),可以作為參考。
2. 分選磁珠可以純化gDNA嗎?
A:翊圣分選磁珠測試過大20kb的片段,回收率>90%?;蚪M DNA 未測試過,測試時,由于大DNA與磁珠結(jié)合的非常緊,建議盡量增加洗脫液體積,避免干燥時間過久。
3. 磁珠的DNA結(jié)合能力怎么樣?
A:在目前的磁珠體系中,磁珠的吸附能力均為過飽和,客戶不必?fù)?dān)心磁珠結(jié)合能力不足的情況。根據(jù)已知的報道,每1 μL磁珠可以結(jié)合7 μg DNA。
4. 使用磁珠吸附小片段的時候,大片段也會吸附上來嗎?
A: 磁珠優(yōu)先吸附大片段,增大磁珠投入量時,磁珠會在吸附大片段的基礎(chǔ)上增強(qiáng)吸附小片段的能力。舉例說明:
參考磁珠純化分選表,100 μL樣本,加入80 μL磁珠Cat#12601,此時磁珠上吸附的是>350 bp的片段,但是,當(dāng)磁珠投入量至100 μL時,磁珠上吸附的是>200 bp的片段。
產(chǎn)品使用效果:
1. 使用磁珠分選/純化之后,還有小片段殘留是怎么回事?
A: 小片段殘留大部分是接頭二聚體/引物二聚體。若純化,降低磁珠比例;若分選:可適當(dāng)降低二輪磁珠比例可有效改善此類情況。
2. 磁珠回收率低可能的原因是什么?
A:1)磁珠與DNA混勻不充分,未能充分吸附。建議反應(yīng)體系充分混勻;
2)磁珠比例不對,建議按照說明書進(jìn)行選擇合適的比例;
3)孵育時間不足,保證孵育時間至少5 min;
4)磁珠分選時,二輪磁珠吸附的時候吸到磁珠。可在200 μL 槍頭前串聯(lián) 10μL槍頭用于移液,可防止吸到磁珠;
5)磁珠洗滌時的乙醇非現(xiàn)配,導(dǎo)致乙醇濃度過低,建議乙醇濃度不低于70%;
6)干燥過度:磁珠長時間干燥導(dǎo)致表面龜裂,DNA難以洗脫,得率降低;建議干燥時間不宜過長,表面剛出現(xiàn)龜裂即可;
7)洗脫液體積不足:終洗脫液應(yīng)*覆蓋管內(nèi)磁珠。
產(chǎn)品儲存:
1. 磁珠不小心放在低溫(-20℃)凍了一段時間,還能用嗎?
A:不能使用,低溫會破壞磁珠表面集團(tuán)的修飾,影響磁珠回收性能。
關(guān)于我們
翊圣生物是專注于分子酶原料創(chuàng)新研發(fā)的高新技術(shù)企業(yè)。而磁珠是NGS文庫構(gòu)建*產(chǎn)品。根據(jù)市場磁珠需求,YEASEN集中專業(yè)人員,致力于磁珠系列產(chǎn)品的創(chuàng)新開發(fā),目前已經(jīng)擁有多款核酸純化類磁珠產(chǎn)品,可應(yīng)用于高通量測序與核酸純化。
圖 翊圣磁珠系列產(chǎn)品
磁珠產(chǎn)品選擇指南
產(chǎn)品 | Hieff NGS® DNA Selection Beads | Hieff NGS® Smarter DNA Beads | Hieff NGS® cfDNA Clean Beads |
貨號 | 12601 | 12600 | 12599 |
性能 | 替換AMPure XP | 專注于小片段DNA回收 | cfDNA純化,告別大片段污染 |
分選 | 250-850 bp范圍內(nèi)DNA分選 | / | 100-200 bp, 100-400 bp DNA分選 |
回收 | >100 bp DNA 回收 | >50 bp DNA回收 | / |
應(yīng)用 | NGS文庫分選/純化 PCR產(chǎn)物純化(>200 bp) 酶切連接產(chǎn)物純化(>200 bp) | PCR產(chǎn)物純化(>50 bp) 酶切連接產(chǎn)物純化(>50 bp) | cfDNA樣本純化 |
訂購信息:
類型 | 名稱 | 貨號 | 規(guī)格 | 價格 |
替換XP | Hieff NGS® DNA Selection Beads | 12601ES08 | 5 mL | 986.00 |
12601ES56 | 60 mL | 6286.00 | ||
12601ES75 | 450 mL | 26186.00 | ||
cfDNA純化 | Hieff NGS® cfDNA Clean Beads | 12599ES08 | 5 mL | 1666.00 |
12599ES56 | 60 mL | 9106.00 | ||
專注小片段回收 | Hieff NGS® Smarter DNA Clean Beads | 12600ES08 | 5 mL | 1386.00 |
12600ES56 | 60 mL | 7586.00 | ||
12600ES75 | 450 mL | 29886.00 |
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