化繁為簡!小翊帶你輕松搞定qPCR數(shù)據(jù)分析
熒光定量PCR(qPCR)是實驗室常用的一種技術(shù),該技術(shù)可以應(yīng)用于基因表達(dá)分析、基因分型、 病原體檢測、SNP分析等。 qPCR實驗操作簡單,原理易懂,但面對一堆凌亂的數(shù)據(jù),如何進(jìn)行結(jié)果分析成了頭疼的問題,今天小翊將帶你學(xué)會如何化繁為簡,輕松獲得可以發(fā)表SCI的數(shù)據(jù)!
qPCR常用的分析方法有相對定量和定量,需根據(jù)不同的實驗設(shè)計進(jìn)行選擇。本期我們關(guān)注的是qPCR常見的應(yīng)用—基因表達(dá)分析,一般選擇相對定量法。
1.實驗設(shè)計
假設(shè)目前需要研究光誘導(dǎo)對擬南芥AtSUC2基因表達(dá)的影響,以未經(jīng)過任何處理的擬南芥植株作為對照組,實驗組為經(jīng)過一定光誘導(dǎo)處理過的植株,分別提取RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,以得到的cDNA為模板,選擇擬南芥GAPDH基因作為內(nèi)參,進(jìn)行qPCR實驗。
需要設(shè)置的qPCR孔如下:
1)NTC用來驗證PCR體系中是否存在污染;
2)NRT是指用未經(jīng)反轉(zhuǎn)錄的RNA作為模板,是對gDNA殘留的控制;
3)內(nèi)參基因用來校正因樣品初始濃度不同而造成的差異;
4)而對照樣品的選擇一般有以下幾種情況:
♦ 某處理方法對基因表達(dá)的影響,將未處理的樣本作為參照樣本;
♦ 檢測基因在不同時間的表達(dá)差異,將0時刻的樣本作為參照樣本;
♦ 比較基因在不同組織中的表達(dá)差異,人為選定一個組織作為參照樣本。
這里需要注意的一點是,上面每個材料都設(shè)置了3個PCR孔(1、2、3),這是PCR重復(fù),即技術(shù)性重復(fù),是為了消除操作誤差,正確評估擴增效率。此外還需設(shè)置生物學(xué)重復(fù),即不同的材料(時間、植株、批次、反應(yīng)板)做的同一實驗,目的是校準(zhǔn)生物學(xué)誤差,分析處理是否具有統(tǒng)計意義。具體到本例中,實驗組和對照組都需要至少再處理兩組擬南芥樣本(A、B、C),分別提RNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,再做qPCR,統(tǒng)計時以三個生物學(xué)重復(fù)的平均值進(jìn)行分析。
2.結(jié)果分析——△△Ct法
△△Ct法的特點是只依靠Ct值來計算結(jié)果,但前提是目的基因與內(nèi)參基因的擴增效率較為一致并且都在90-110%之間。具體的計算公式為:
△Ct= Ct(目的基因)- Ct(內(nèi)參基因)
△△ Ct= △Ct(實驗組)- △Ct(對照組)
RQ=2^-△△Ct,RQ即為研究的目的基因在處理的樣本中相比對照組的相對表達(dá)量。
假設(shè)上面研究光誘導(dǎo)對擬南芥AtSUC2基因表達(dá)影響的實驗中,qPCR的結(jié)果如下:
| 實驗組(復(fù)孔Ct平均值) | 對照組(復(fù)孔Ct平均值) | ||||
A | B | C | A | B | C | |
AtSUC2 | 23.60 | 23.00 | 23.15 | 25.80 | 26.32 | 27.00 |
GAPDH | 16.75 | 16.80 | 16.72 | 16.75 | 16.50 | 16.00 |
△Ct | 6.85 | 6.20 | 6.43 | 9.05 | 9.82 | 11.00 |
2^-△Ct | 0.00867 | 0.01360 | 0.01160 | 0.00189 | 0.00111 | 0.00049 |
|
|
|
| 0.00116 | ||
2^-△△Ct | 7.47285 | 11.72617 | 9.99814 | 1.62637 | 0.95373 | 0.42093 |
Ave | 9.73238 | 1.00035 | ||||
SEM | 2.13907 | 0.60407 |
計算時,首先我們把對照組的2^-△Ct數(shù)據(jù)求平均值(上圖中為0.00116),然后用2^-△Ct中的每一個數(shù)據(jù)除以這個平均值,即得到2^-△△Ct的值,后再整理得到平均值與標(biāo)準(zhǔn)差,表明實驗組目的基因表達(dá)量相比對照組提高了約9.73倍。結(jié)果用Graphpad軟件作圖如下:
利用軟件的t檢驗計算出P value=0.0024<0.05,表明具有統(tǒng)計學(xué)差異,結(jié)果可信。
3.結(jié)果分析——雙標(biāo)準(zhǔn)曲線法
在實際應(yīng)用中,由于目的基因與內(nèi)參基因的擴增效率常常是不同的,需要重新設(shè)計引物,優(yōu)化反應(yīng)條件使得擴增效率相同,但其實我們還可以選擇更方便的雙標(biāo)準(zhǔn)曲線法。
這里我們先了解下定量的分析方法。具體的步驟是先通過PCR擴增目的片段,然后將目的片段插入克隆載體中,提取重組質(zhì)粒,待測序正確后即可作為標(biāo)準(zhǔn)品。質(zhì)粒DNA量可用Nanodrop等儀器測定,通過拷貝數(shù)換算公式轉(zhuǎn)換成具體的質(zhì)??截悢?shù),然后進(jìn)行倍比稀釋后擴增。以標(biāo)準(zhǔn)品拷貝數(shù)的對數(shù)值為橫坐標(biāo),以測得的Ct值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)未知樣品的Ct值就可以計算出其拷貝數(shù)。
拷貝數(shù)計算公式:拷貝數(shù)=(質(zhì)量÷相對分子質(zhì)量)×6.02×1023。
雙標(biāo)準(zhǔn)曲線法是通過分別構(gòu)建目的基因與內(nèi)參基因的標(biāo)準(zhǔn)品,進(jìn)行定量并制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算出未知樣品拷貝數(shù)之后再進(jìn)行比較,因此準(zhǔn)確性更高。
具體的計算公式為:
Q=目的基因拷貝數(shù)/內(nèi)參基因拷貝數(shù)
RQ=Q實驗/Q對照
假設(shè)上面研究光誘導(dǎo)對擬南芥AtSUC2基因表達(dá)影響的實驗中,分別構(gòu)建AtSUC2與GAPDH的標(biāo)準(zhǔn)品,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線如下:
待測樣品目的基因和內(nèi)參基因的Ct值如下:
| 實驗組 | 對照組 | |||||
| A | B | C | A | B | C | |
AtSUC2 | Ct值 | 23.60 | 23.00 | 23.15 | 25.80 | 26.32 | 27.00 |
Copies | 2238.72 | 2884.03 | 3083.19 | 466.34 | 321.88 | 198.15 | |
GAPDH | Ct值 | 16.75 | 16.80 | 16.72 | 16.75 | 16.50 | 16.00 |
Copies | 218776.16 | 213796.21 | 223872.11 | 219785.99 | 260615.35 | 365594.79 | |
Q | 0.01023 | 0.01349 | 0.01377 | 0.00212 | 0.00124 | 0.00054 | |
|
|
|
| 0.00130 | |||
RQ | 7.87148 | 10.37664 | 10.59392 | 1.63214 | 0.95007 | 0.41692 | |
Ave | 9.61401 | 0.99971 | |||||
SEM | 1.51298 | 0.60913 |
計算時,首先將目的基因與內(nèi)參基因的Ct值代入標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性關(guān)系中,獲得目的基因與內(nèi)參基因分別在實驗組和對照組中的拷貝數(shù),然后按公式Q=目的基因拷貝數(shù)/內(nèi)參基因拷貝數(shù),使得目的基因的表達(dá)量均一化。后按公式RQ=Q實驗/Q對照,計算出RQ= 9.71,表示目的基因在實驗組的表達(dá)量比對照組上升9.71倍。
結(jié)果用Graphpad軟件作圖如下:
利用軟件的t檢驗計算出P value=0.0008<0.05,表明具有統(tǒng)計學(xué)差異,結(jié)果可信。
本期的qPCR數(shù)據(jù)分析就到這里結(jié)束了,下面小翊為你推薦一波產(chǎn)品,讓你的實驗數(shù)據(jù)更加準(zhǔn)確可靠,快來pick吧!
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 | 價格(元) | *(元) |
Hifair® Ⅲ 1st Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR (gDNA digester plus) | 11141ES60 | 100 T | 1383 | 798 |
Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (No Rox ) | 11201ES08 | 5 mL | 740 | 498 |
Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (Low Rox Plus) | 11202ES08 | 5 mL | 740 | 498 |
Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus) | 11203ES08 | 5 mL | 740 | 498 |
Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,No Rox) | 11195ES08 | 5 mL | 1653 | 663 |
Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,Low Rox) | 11196ES08 | 5 mL | 1653 | 663 |
Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,High Rox) | 11197ES08 | 5 mL | 1653 | 663 |
Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,No Rox) | 11198ES08 | 5 mL | 1466 | 586 |
Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,Low Rox) | 11199ES08 | 5 mL | 1466 | 586 |
Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,High Rox) | 11200ES08 | 5 mL | 1466 | 586 |
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