BIA Separations!讓病毒純化更高效---基因治療
基因治療是目前生物醫(yī)藥領(lǐng)域熱門的話題之一,生物醫(yī)藥行業(yè)對基因治療持續(xù)高漲的熱情,令該領(lǐng)域許多公司開始將一次治愈性基因療法,作為其開發(fā)的戰(zhàn)略核心。
有行業(yè)報告顯示,未來預(yù)計 6 年內(nèi),將有多達 60 種基因療法獲得批準(zhǔn),這些基因療法在 2024 年的銷售額將達到 146 億美元。
基因治療的核心是基因載體,病毒載體占據(jù)著主導(dǎo)地位。目前腺相關(guān)病毒(AAV)和慢病毒(LV)是臨床上廣泛使用的病毒載體。
從 2012 年荷蘭 UniQure 公司的,世界上 AAV 基因治療藥物 Glybera 在歐盟獲上市,到 2016 年 GSK 與意大利 San Raffaele 合作開發(fā)的 LV 基因治療藥物 Strimvelis 再次在歐盟獲批,再到 2017 年諾華獲得 FDA 腫瘤藥物咨詢委員會以 10:0 的投票結(jié)果,一致批準(zhǔn)的自體回輸 CAR-T 細胞療,及同年 Spark Therapeutics 公司獲 FDA 批準(zhǔn)的一個傳疾病的基因治療藥物 Luxturna,AAV 和 LV 越來越成為基因治療的主角。AAV 和 LV 大都采用質(zhì)粒瞬時轉(zhuǎn)染方法生產(chǎn),從而高質(zhì)量、高純度的質(zhì)粒是制 AAV、LV 等病毒載體的前提條件。
質(zhì)粒是常見的分子生物學(xué)工具,是一段 DNA 雙螺旋結(jié)構(gòu)。而抽提質(zhì)粒幾乎是分子生物學(xué)基礎(chǔ)實驗之一。
科研水平的實驗,通常的質(zhì)粒抽提試劑盒就足以滿足微克至數(shù)毫克級的需求,但是如果需要大規(guī)模制備病毒載體,試劑盒的質(zhì)粒產(chǎn)量就非常的力不從心了。
此外,包裝病毒通常需要三個質(zhì)?;蛩膫€質(zhì)粒,每個質(zhì)粒大小、序列都不一樣,上游表達量也有區(qū)別,甚至穩(wěn)定性都有差異。
面對如此眾多品種的質(zhì)粒,有沒有一種質(zhì)粒 DNA 純化平臺,能夠適用多種質(zhì)粒的、可放大的,滿足基因治療、細胞治療和疫苗的高純度和同質(zhì)性的標(biāo)準(zhǔn)要求,并且還需要有效,穩(wěn)健和可擴展的下游過程呢?
接下來為大家隆重介紹 BIA Separations 提供的,基于對流相互作用介質(zhì)(CIM)層析整體柱的兩步質(zhì)粒 DNA(pDNA)純化平臺!
該方法除了具有以上全部優(yōu)點,并且可以明顯降低純化時間,提高生產(chǎn)效率,使其成為 GMP 環(huán)境下的大規(guī)模 pDNA 純化的選擇。
該方法專為純化大分子和納米顆粒的整體柱而設(shè)計,可實現(xiàn)快速操作,高流量,同時提供動態(tài)結(jié)合能力和分辨率。
首先要為整個過程中的核心——兩步層析步驟,準(zhǔn)備細菌培養(yǎng)液
1. 大腸桿菌收獲、裂解-堿裂解:
這是快速高效純化質(zhì)粒 DNA 亞型的基礎(chǔ)。
操作建議:
先收集菌體;
然后采用堿性裂解法制備原料;
再將細菌細胞(通常是細胞生物質(zhì)或細胞沉淀)懸浮在 50 mMTris-HCl,10 mM EDTA,pH8.0 中;
通過加入等體積的 0.1-0.4M NaOH,1%SDS 進行裂解。
2. 裂解液濃縮:
氯化鈣沉淀后澄清,除去了大量的主要樣品雜質(zhì)
??????? 裂解后,懸浮液變粘稠,通過加入與懸浮緩沖液等體積的,4-8℃ 冷卻的 3M CH 3 COOK(pH 5.5)沉淀細胞碎片和 SDS 復(fù)合物。
??????? 在溫和混合下,緩慢加入 CaCl2 并孵育 15 分鐘。
TIPS:
1. 氯化鈣用作沉淀劑,以去除 RNA、基因組 DNA 和其他雜質(zhì);
2. 較高濃度的雜質(zhì)需要 CaCl2 濃度高達 1M;
3. 考慮測試多種濃度并評估產(chǎn)品中雜質(zhì)的有效去除和未受影響的 pDNA 產(chǎn)量;
4. 加入速度應(yīng)該很慢,以防止局部溫度上升;
5. 孵育后,進行一系列澄清步驟,從離心或粗過濾開始,例如 80μm 深度過濾,并以 1-5μm 過濾結(jié)束。
(低溫有利于沉淀,混合過程應(yīng)該溫和操作,以防止 DNA 降解。)
前面 blabla 說了那么多,然而純化才是本工藝的精華所在。
BIA Separations 的二步純化工藝的穩(wěn)健性、連貫性、時效性,均堪稱教科書式的經(jīng)典。
首先純化的柱子,通過弱陰離子交換,濃縮 pDNA 并去除大部分 HCP、mRNA 和基因組 DNA;
第二步利用疏水相互作用色譜(HIC)的拋光步驟,進一步從超螺旋(SC)治療級 pDNA 中除去開環(huán)(OC)和線性 pDNA 亞型。
兩步純化的作用功能明確、互相合作,大大節(jié)省操作步驟和時間。
??????? AEX 色譜柱(CIMmultus™DEAE)濃縮 pDNA,并去除大部分 HCP、mRNA 和基因組 DNA。
??????? 在弱陰離子交換柱上捕獲質(zhì)粒 DNA,其中除去剩余的 RNA 和蛋白質(zhì),樣品結(jié)合需要低電導(dǎo)率,通過稀釋實現(xiàn)。
??????? 隨著增加 NaCl 的梯度洗脫,首先洗脫 RNA,然后洗脫質(zhì)粒 DNA。
層析條件
Monolithic column: | CIMmultus™ DEAE(2 µm)*1 |
phase: | Equilibration buffer A1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, pH 7.2 |
Washing buffer A2: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 0.6 M NaCl, pH 7.2 | |
Elution buffer A3: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 1 M NaCl, pH 7.2 | |
Working flow rates: | 0.5 – 5 column volume (CV) /min (具體取決于樣品特性,使用的層析設(shè)備和色譜柱尺寸) |
*1 選擇色譜柱體積,取決于需要處理的樣品量。
層析方法
1. 用去離子水稀釋細菌裂解物至電導(dǎo)率為 35-40mS / cm。稀釋取決于樣品制備過程中添加的 CaCl2 濃度。
2. 將稀釋的樣品用 0.45μm 過濾器進行過濾。
3. 將 20CV 的緩沖液 A1 平衡 DEAE 柱。
4. 將澄清的稀釋細菌裂解液進行上樣。
5. 用 20 CV 的緩沖液 A1 對色譜柱進行流洗。
6. 用 20 CV 的緩沖液 A2 對色譜柱進行流洗。
7. 用 20 CV 的緩沖液 A3(以半工作流速)洗脫并收集 pDNA。
圖 1:AEX CIMmultus™DEAE(2μm)柱上的質(zhì)粒 DNA 洗脫曲線
??????? 在高配體密度丁基修飾的(CIMmultus TM C4 HLD)整體柱上,利用疏水相互作用色譜柱(HIC)的拋光步驟,進一步從 超螺旋(SC)治療級 pDNA 中除去開環(huán)(OC)和線性 pDNA 亞型。
??????? ??????? 為了富集質(zhì)粒 DNA 的超螺旋亞型,將 DEAE 洗脫液上樣到高配體密度丁基柱(C4 HLD)上。
??????? ??????? 該步驟進一步去除了雜質(zhì)。
層析條件
phase: | Equilibration buffer B0: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 3 M (NH4)2SO4, pH 7.2 |
Washing buffer B1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 1.7 M (NH4)2SO4, pH 7.2 | |
Adjustment buffer: 4 M (NH4)2SO4 | |
Elution buffer B2: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 0.4 M (NH4)2SO4 , pH 7.2 | |
Regeneration buffer A1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, pH 7.2 | |
Working flow rates: | 0.5 – 5 CV/min (具體取決于樣品特性、使用的層析設(shè)備和色譜柱尺寸) |
*2 選擇色譜柱體積,取決于需要處理的樣品量。
層析方法
1. 調(diào)節(jié)來自 DEAE 柱的含 pDNA 洗脫液,每 1 體積(V)洗脫液加入 3 體積(V)的 4M(NH4)2SO4。
2. 用 20CV 的緩沖液 B0 來平衡 C4 HLD 柱。
3. 將 DEAE 柱洗脫的 pDNA 組份上樣。
4. 用 20 CV 的緩沖液 B1 流洗色譜柱。
5. 用緩沖液 B2(以半工作流速)洗脫并收集 pDNA。
6. 用 30 CV 的緩沖液 A1 再生色譜柱。
7. 加樣 3 次后,對柱子進行清洗。
圖 2:在 HIC CIMmultus TM C4 HLD(2μm)柱上分離超螺旋質(zhì)粒 DNA
· 從 C4 HLD 柱洗脫的超螺旋 pDNA 組份含有硫酸銨,必須在生物應(yīng)用質(zhì)粒之前將其除去。
· 緩沖液交換可通過透析濾過或體積排除色譜等方法進行。
· 配置和填充可能需要額外的處理。
二步法層析過程分析:
??????? 質(zhì)粒 DNA 制造成功的關(guān)鍵是實時過程控制方法,確保終產(chǎn)品中高百分比的超螺旋 pDNA。
?????????? CIMac™pDNA 分析柱可用于監(jiān)測降解產(chǎn)物(開環(huán)和線性 pDNA),去除雜質(zhì)(RNA),并確保每個生產(chǎn)步驟都能產(chǎn)生預(yù)期的超螺旋 pDNA 量。
??????? ???????CIMac™pDNA 分析柱還用于超螺旋質(zhì)粒 DNA 含量的質(zhì)量控制。
圖 3:使用 CIMac™pDNA-0.3 分析柱的質(zhì)粒 DNA 亞型含量的質(zhì)量控制
結(jié)果和結(jié)論:
??????? ????? 通過優(yōu)化裂解、沉淀和兩種色譜步驟相結(jié)合,可生產(chǎn)滿足所有監(jiān)管要求的純 pDNA。
??????? ??????? 可以完成去除 99% 以上的主要雜質(zhì)(RNA,基因組 DNA,宿主細胞蛋白,內(nèi)毒素和開環(huán) pDNA)。
??????? ??????? 此外,快速(大腸桿菌的 pDNA 提取和純化可在幾小時內(nèi)完成),可重復(fù)的過程可降低運營成本并提高工廠生產(chǎn)率。
??????? ??????? *的整體特性有助于該過程的直接可擴展性,涵蓋從小規(guī)模實驗室到大規(guī)模工業(yè)純化 pDNA 的生產(chǎn)水平。
Table 1: Process results.
Process yield | > 80 % |
A260/280 | 1.92 |
Homogeneity (SC pDNA) | > 97 % |
HCD – removed | > 99.5 % |
HCP - removed | > 99 % |
Endotoxin | < 2 EU/mg pDNA |
RNA - removed | > 99 % |
點評
目前市面上有不少質(zhì)粒純化工藝方案,但是比較下來,BIA 二步法純化工藝具有兩大優(yōu)勢:
??????? 效率明顯提高
只需兩步色譜和高流速的整體柱色譜方案,減少工藝步驟(提高回收率)并加快純化速度,從而顯著提高生產(chǎn)率。
??????? 靈活放大
由于特定的整體柱設(shè)計,質(zhì)粒 DNA 過程可以快速擴展到更大的單位。
在 1 毫升色譜柱上設(shè)計的工藝可以輕松轉(zhuǎn)移到試驗和生產(chǎn)規(guī)模。
在 8L 色譜柱上單次運行可以產(chǎn)生 48 g 藥物級 scDNA。
Table 2: Scale up options.
Column size | pDNA purified per cycle |
1 mL | 6 mg |
8 mL | 48 mg |
80 mL | 480 mg |
800 ml | 4.8 g |
8000 mL | 48 g |
十多年來,BIA Separations 一直是高效率質(zhì)粒純化的好選擇。它不僅提供整體柱和平臺模板,還提供定制的純化服務(wù),以*您的質(zhì)粒 DNA 純化需求
159 0176 2218(VX同號)
是不是很厲害是不是很高級快快快快聯(lián)系我們!
相關(guān)產(chǎn)品
免責(zé)聲明
- 凡本網(wǎng)注明“來源:化工儀器網(wǎng)”的所有作品,均為浙江興旺寶明通網(wǎng)絡(luò)有限公司-化工儀器網(wǎng)合法擁有版權(quán)或有權(quán)使用的作品,未經(jīng)本網(wǎng)授權(quán)不得轉(zhuǎn)載、摘編或利用其它方式使用上述作品。已經(jīng)本網(wǎng)授權(quán)使用作品的,應(yīng)在授權(quán)范圍內(nèi)使用,并注明“來源:化工儀器網(wǎng)”。違反上述聲明者,本網(wǎng)將追究其相關(guān)法律責(zé)任。
- 本網(wǎng)轉(zhuǎn)載并注明自其他來源(非化工儀器網(wǎng))的作品,目的在于傳遞更多信息,并不代表本網(wǎng)贊同其觀點和對其真實性負責(zé),不承擔(dān)此類作品侵權(quán)行為的直接責(zé)任及連帶責(zé)任。其他媒體、網(wǎng)站或個人從本網(wǎng)轉(zhuǎn)載時,必須保留本網(wǎng)注明的作品第一來源,并自負版權(quán)等法律責(zé)任。
- 如涉及作品內(nèi)容、版權(quán)等問題,請在作品發(fā)表之日起一周內(nèi)與本網(wǎng)聯(lián)系,否則視為放棄相關(guān)權(quán)利。