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          FISH探針的制備

          來(lái)源:自然基因科技有限公司   2024年05月10日 10:40  


          熒光原位雜交(FISH)探針的制備

           

          實(shí)驗(yàn)原理

           

          染色體熒光原位雜交始于傳統(tǒng)的細(xì)胞遺傳學(xué)和DNA技術(shù)的結(jié)合,這種結(jié)合開(kāi)創(chuàng)了一門(mén)新的學(xué)科——分子細(xì)胞遺傳學(xué)。其基礎(chǔ)是Southern blot原理,以半抗原如生物素標(biāo)記或以熒光素直接標(biāo)記的已知核酸分子為探針,探針和靶序列雙鏈DNA變性后雜交,互補(bǔ)的異源單鏈DNA分子在適宜的溫度和離子強(qiáng)度下退火形成穩(wěn)定的異源雙鏈DNA,通過(guò)熒光標(biāo)記的親和素將半抗原顯示出來(lái),通過(guò)熒光顯微鏡觀察雜交信號(hào)。FISH具有快速靈敏、特異性好的特點(diǎn),可同時(shí)分析分裂期和間期的多個(gè)細(xì)胞,并進(jìn)行定量;可以檢測(cè)隱匿或微小的染色體畸變以及復(fù)雜核型;還可以使用多種熒光標(biāo)記,顯示DNA片段及基因之間的相對(duì)位置與方向,空間定位精確。

           

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          實(shí)驗(yàn)步驟


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          第一天

          缺口平移標(biāo)記探針

          1. 試劑準(zhǔn)備

             1) 0.1mmol/L dNTP

          0.3mmol/L dATP、0.3mmol/L dCTP和0.3mmol/L dGTP等體積混合。

             2) 0.1mmol/L dTTP

          1倍體積的0.3mmol/L dTTP和2倍體積的三蒸水混合。

          2. 缺口平移體系和反應(yīng)條件

          0.1mmol/L dTTP 6.5μl

          0.1mmol/L dNTP 10μl

          10× Nick Translation buffer 5μl

          1mmol/L DIG-11-dUTP /Biotin-16-dUTP 0.5μl

          Nick Translation Enzyme 10μl

          DNA (1μg) X μl

          H2O 18-X μl

          in total 50μl

          以上為標(biāo)記1μg DNA的缺口平移體系,若標(biāo)記更多量的DNA,則試劑量和反應(yīng)體系相應(yīng)等倍擴(kuò)大。各成分混勻后短時(shí)離心。對(duì)于≤10kb的質(zhì)粒,于15℃反應(yīng)3.5小時(shí);對(duì)于BAC/PAC,于15℃反應(yīng)9小時(shí)。

          3. 凝膠電泳判斷探針大小

          將EP管置于冰上,取其中5μl 于70℃加熱5分鐘后行2 %瓊脂糖凝膠電泳以觀察所標(biāo)記探針的大小,單一序列探針合適大小為200~600bp;如片段大小偏大,則于15℃延長(zhǎng)反應(yīng)10~30分鐘,再重復(fù)進(jìn)行凝膠電泳,直至得到合適大小的探針。

          4. 終止反應(yīng)

          向反應(yīng)體系中加入1μl 0.5M EDTA和(或)70℃加熱5分鐘,以滅活酶。探針于-20℃保存?zhèn)溆谩?/span>

          第二天

          1. 探針的沉淀和變性

             1) 探針混合物的組成

                a. 對(duì)BAC/PAC探針

          DNA探針 5ul

          Human Cot-1 DNA 3ul

          Salmon Sperm DNA 0.5ul

          H2O 1.5ul

          in total 10ul

                b. 對(duì)著絲粒探針:

          DNA探針 5ul

          Salmon Sperm DNA 0.5ul

          H2O 4.5ul

          in total 10ul

             2) DNA的沉淀

          將探針混合物與1ul(V/10)3M醋酸鈉(PH5.2)和27.5ul(2.5V)無(wú)水乙醇(-20℃凍存)混合,-80℃沉淀30min(或-20℃沉淀過(guò)夜),以14000g在4℃離心30min,以沉淀DNA。

             3) 清洗沉淀

          小心棄去上清,用70 %乙醇洗滌一次,再次以14000g在4℃離心15min;小心棄去上清,在45~50℃的中溫水浴中風(fēng)干DNA沉淀10~15min。

          注:當(dāng)大部分乙醇蒸發(fā)時(shí),白色的DNA沉淀變?yōu)榘胪该鳡睿粍?wù)必清除乙醇,否則會(huì)在加入Master Mix后產(chǎn)生微小的沉淀,導(dǎo)致高背景。

             4) 溶解探針

          加入5μl 預(yù)熱至37℃的去離子甲酰胺(PH 7.0),短時(shí)離心后在37℃振搖30min以充分溶解DNA;再加入預(yù)熱至37℃的Master Mix 5μl,短時(shí)離心后在37℃振搖15~30min。

          注:振搖時(shí)間盡可能延長(zhǎng);DNA沉淀亦可以TE緩沖液1.1μl溶解后加入Vysis探針緩沖液4.4μl稀釋?zhuān)靹蚝笏矔r(shí)離心,37℃振搖15~30min。

             5) 探針的變性和預(yù)雜交

          短時(shí)離心后于80℃水浴中變性探針10min,冰浴5分鐘;短時(shí)離心,于37℃水浴中預(yù)雜交30~60min;序列探針(如cDNA)和重復(fù)序列探針(如α-衛(wèi)星DNA)探針,無(wú)需預(yù)雜交。

          2. 標(biāo)本(染色體靶DNA)的處理和變性

             1) 滴片和老化

          取出儲(chǔ)存于-20℃的細(xì)胞懸液標(biāo)本,以1100 rpm.離心10min沉淀細(xì)胞,換用適量體積的新鮮甲醇:冰乙醇(v/v)=3:1固定液重懸細(xì)胞并調(diào)整細(xì)胞密度,滴片,劃出雜交區(qū)域,晾干;在預(yù)熱到 37℃的2×SSC中老化30min(也可實(shí)驗(yàn)前夜室溫過(guò)夜老化再以2×SSC浸泡2分鐘);依次于70 %、90 %和100 %的梯度乙醇中依次脫水,每缸2min,晾干(以下略作“梯度乙醇脫水后涼干”)。

             2) RNase A消化

          每張玻片上加30μl 100μg/ml RNA酶(將10mg/ml的RNase A儲(chǔ)存液稀釋100倍),蓋上22×22mm蓋玻片,置于37℃濕盒中孵育1小時(shí);室溫下2×SSC中振蕩洗滌,5min/次×3次;梯度乙醇脫水后涼干。

             3) 靶DNA的變性

          將玻片放入預(yù)溫至72℃(每增加一張玻片,溫度要提高1℃)的70 %去離子甲酰胺/2×SSC中變性2分鐘后,立即置入預(yù)冷至-20℃保存的梯度乙醇脫水晾干。

             4) 蛋白酶消化

          將50μl 100 mg/ml的胃蛋白酶(終濃度為0.01 %)加入預(yù)溫至37℃的50ml蒸餾水(PH 2.0,以適量稀鹽酸酸化)中,混勻;將變性后的玻片放入其中處理10分鐘;室溫下1×PBS中振蕩洗滌,5min/次×2次;室溫下梯度乙醇脫水后涼干。

          注:靶DNA的變性和消化應(yīng)與探針變性同步進(jìn)行,完成后盡快進(jìn)行雜交。

          3. 雜交

          將變性后的DNA探針加于玻片雜交區(qū)域,蓋上22mm×22mm蓋玻片,封片后置于濕盒中,37℃雜交過(guò)夜。

          第三天

          1. 雜交后洗滌和半抗原信號(hào)放大

             1) 雜交后洗片

          小心揭去封片膠和蓋玻片,將玻片置于預(yù)熱至46℃的50 %甲酰胺/2×SSC中,5min×3缸;將玻片移入室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸;每張玻片滴加30 μl阻斷液1,蓋上22mm×22mm蓋玻片,于37℃濕盒中孵育30min;再次將玻片移入室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸。

          注:此后步驟應(yīng)注意避光操作。

             2) 滴加一抗

          將4 μl Anti-DIG monoclonal antibody 和0.5 μl Texas-red-Avidin 稀釋于100 μl 抗體稀釋液1中,混勻;每張玻片滴加25 μl 于雜交區(qū)域,蓋上22mm×22mm蓋玻片,于37℃濕盒中孵育1小時(shí);室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸。

             3) 滴加二抗

          將4 μl Anti-mouse-Ig-DIG 和1 μl Biotinylated goat anti-Avidin 稀釋于100 μl 抗體稀釋液1中,混勻;每張玻片滴加25 μl 于雜交區(qū)域,蓋上22mm×22mm蓋玻片,于37℃濕盒中孵育40min;室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸。

             4) 滴加三抗

          將4 μl Anti-DIG-Fluorescein和0.5 μl Texas-red-Avidin 稀釋于100 μl 抗體稀釋液1中,混勻;每張玻片滴加25 μl 于雜交區(qū)域,蓋上22mm×22mm蓋玻片,于37℃濕盒中孵育30min;室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸。

          注:以上步驟按雙色FISH描述,若為單色FISH則選擇相應(yīng)抗體即可。

          2. 核復(fù)染和抗熒光淬滅劑封片

          將1.25 μl 5 mg/ml的DAPI加入50 ml 2×SSC中(終濃度為125 ng/ml,避光保存于4℃),混勻;將玻片置于其中,避光復(fù)染2min;2×SSC中洗滌5min;梯度乙醇脫水晾干;每張玻片滴加10 μl 抗熒光淬滅劑封片,蓋上22mm×22mm蓋玻片,-20℃避光保存。

          3. 熒光顯微鏡檢測(cè)FISH雜交信號(hào)

          以熒光顯微鏡觀察,在DAPI/FITC/Texas Red濾光鏡激發(fā)下觀察中期/間期細(xì)胞的熒光雜交信號(hào),計(jì)數(shù)細(xì)胞和采集圖像。每例分析100~200個(gè)間期細(xì)胞核細(xì)胞,重疊、破損、未去除細(xì)胞質(zhì)和雜交信號(hào)微弱的細(xì)胞核不計(jì)入其中。對(duì)于雙色雙融合FISH,細(xì)胞內(nèi)雜交信號(hào)相互靠近(<1/10核直徑的距離)者計(jì)為一個(gè)信號(hào)。

          4. 儲(chǔ)存數(shù)據(jù)

           

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