近年來,為更快地將創(chuàng)新療法帶給患者,加快藥物開發(fā)進程已成為生物制藥行業(yè)的主要關(guān)注點。重組中國倉鼠卵巢 (CHO) 細胞系是單克隆抗體 (mAb) 的主要表達系統(tǒng),為了加快生物制藥進程,如何提高宿主細胞外源基因表達量及穩(wěn)定性水平是個棘手的熱門話題,目前通常通過將遺傳信息隨機轉(zhuǎn)基因整合 (RTI:Random Transgene Integration)到宿主細胞基因組中產(chǎn)生,即通過選擇性標(biāo)記進行多輪篩選以獲得具有高表達水平的克隆。而由于缺乏對隨機整合插入位點的控制,部分克隆細胞系的重組蛋白生產(chǎn)力可能會隨著時間的推移而減少,導(dǎo)致細胞系不穩(wěn)定。因此,RTI代表了一種容易出錯且乏味的方法,導(dǎo)致開發(fā)時間很長。定點整合 (SSI:Site-Specific Integration) 被確定為 RTI的一種有前途的替代品,因為它可以更快速地生成高性能和穩(wěn)定的生產(chǎn)細胞系,加速藥物開發(fā)進程。
基于RTI(上圖)與SSI(下圖)的細胞系開發(fā)過程圖示[1]
在基于RTI的細胞系開發(fā)過程中,攜帶轉(zhuǎn)基因遺傳信息和選擇標(biāo)記的線性化質(zhì)粒穩(wěn)定地整合到CHO宿主細胞的基因組中。因此,具有不可預(yù)測結(jié)構(gòu)的多拷貝轉(zhuǎn)基因整合將發(fā)生在未知基因組位點上,代謝選擇后產(chǎn)生的細胞庫顯示出高水平的基因組和表型多樣性。對于基于SSI的CLD,能夠在基因組的特定位點精確插入或整合外源DNA片段,從而實現(xiàn)對特定基因的添加、刪除或替換,可使得細胞庫顯示出較低的表型異質(zhì)性。相比于RTI,SSI具有高整合效率、外源基因可實現(xiàn)精確定位、基因表達具有一致性、減少位置效應(yīng)使得基因表達受控、提高細胞株的安全性及簡化篩選流程等優(yōu)勢。
常見的SSI技術(shù)方法
利用CRISPR-Cas9或其他變體,結(jié)合特異性向?qū)NA(sgRNA),在基因組中特定位置切割DNA,并通過同源重組修復(fù)(HDR)或非同源末端連接(NHEJ)插入外源DNA。
如Sleeping Beauty、piggyBac轉(zhuǎn)座子系統(tǒng),通過轉(zhuǎn)座酶在特定位置插入外源基因。
如BxB1、Cre-LoxP、FLP-FRT和PhiC31等系統(tǒng),通過特異性識別序列進行重組,實現(xiàn)外源DNA的整合。
Gaidukov L, Wroblewska L等人[2]2018年發(fā)表于Nucleic Acids Research的文章,確定了21個支持轉(zhuǎn)基因穩(wěn)定長期表達的新基因組位點,然后在選定的位點構(gòu)建了包含一個、兩個或三個“著陸墊”重組位點的細胞系。通過在每個位點使用高效的BxB1重組酶以及不同的選擇標(biāo)記,將重組酶介導(dǎo)的異源DNA插入到選定的位點,包括通過單次轉(zhuǎn)染靶向所有三個位點。使用這種方法可控地整合多達9個拷貝的單克隆抗體,代表21個轉(zhuǎn)錄單元中約100 kb的異源DNA。由于整合針對預(yù)先驗證的位點,重組蛋白表達在數(shù)周內(nèi)保持穩(wěn)定,并且整合有效載荷中抗體盒的額外拷貝導(dǎo)致抗體表達線性增加??傮w而言,該多拷貝位點特異性整合平臺允許將大量DNA可控且可重復(fù)地插入穩(wěn)定的基因組位點,在哺乳動物合成生物學(xué)、重組蛋白生產(chǎn)和生物制造方面具有廣泛的應(yīng)用。
BxB1整合酶定點整合外源基因
Feary M, Moffat MA等人[3]在2021年發(fā)表于Biotechnology Progress的文章, 將Fer1L4位點與CHOK1SV谷氨酰胺合成酶敲除 (GS-KO) 宿主相結(jié)合,創(chuàng)建了一個改進的CHOK1SV GS-KO 定點整合表達系統(tǒng)。CHOK1SV GS-KO SSI宿主是通過同源定向整合Fer1L4基因中不相容的Frt序列的靶向著陸墊創(chuàng)建的,靶向載體包含無啟動子GS表達盒和mAb表達盒,兩側(cè)是與宿主細胞系中著陸墊兩側(cè)的等效位點兼容的Frt 位點。
FLP/FRT重組酶定點整合外源基因圖示
Zhou M, Crawford Y等人[4]在2021年發(fā)表于Biotechnology Progress的文章,利用Cre/Lox重組酶介導(dǎo)的盒式交換(RMCE)將表達抗體的盒引入預(yù)定位點,建立了CHO-K1-M衍生的SSI宿主細胞。兩個SSI宿主細胞都包含一個表達GFP的著陸墊,兩側(cè)是兩個不兼容的LoxP重組位點(L3和2L)。此外,在GFP著陸墊中插入了第三個不相容的LoxP位點(LoxFAS),以實現(xiàn)基于雙質(zhì)粒的創(chuàng)新RMCE策略,其中兩個獨立的載體可以同時靶向單個位點。
Cre/Lox重組酶定點整合外源基因圖示
目前,已有一些制藥企業(yè)(武田制藥、羅氏、強生等)利用智能定點整合技術(shù)優(yōu)化其生物藥物的生產(chǎn)流程,包括開發(fā)穩(wěn)定細胞株用于大規(guī)模生產(chǎn)。而利用整合酶定點整合外源基因的方式對于國內(nèi)制藥企業(yè)來說目前還是處于萌芽階段。但定點整合技術(shù)對抗體藥物開發(fā)帶來的前景是可預(yù)期的,眾多生物制藥企業(yè)一直期盼能盡快將定點整合應(yīng)用于自身平臺中,加速細胞株的開發(fā)。
通過定點整合技術(shù),將目標(biāo)基因序列通過同源重組的方式轉(zhuǎn)染到已經(jīng)通過前期篩選驗證過的活躍位點當(dāng)中,構(gòu)建均一細胞池。其首先需要構(gòu)建平臺細胞,利用報告基因(如GFP 等) 篩選得到宿主細胞基因組中的高表達位點,之后利用重組酶的特異性,實現(xiàn)將目標(biāo)產(chǎn)品基因插入在該表達量高、質(zhì)量和表達量穩(wěn)定的宿主細胞基因組位點,再利用Cytena克隆篩選單細胞打印系統(tǒng),獲得穩(wěn)定及高產(chǎn)的單克隆細胞株。
定點整合單克隆篩選流程
細胞類型:CHO-K1
細胞狀態(tài):35%陽性率;80%活率
單細胞挑選設(shè)備:Cytena克隆篩選單細胞打印系統(tǒng),對照組:FACS
單細胞、單克隆率:
通過無熒光轉(zhuǎn)化子同源同組,細胞樣品內(nèi)有帶有熒光的母細胞也有無熒光即轉(zhuǎn)化子同組成功的目的細胞,12天后采用Cytena克隆篩選單細胞打印系統(tǒng)進行無熒光細胞鋪板(只分選非熒光的細胞),單細率約為85%,克隆恢復(fù)率約為20%,而對照組流式由于分選過程對單細胞狀態(tài)及活力造成損傷,后續(xù)單細胞難以恢復(fù)成克隆。此流程可以省去minipool與有限稀釋的環(huán)節(jié),加快開發(fā)流程,值得一提的是,用定點整合方式,經(jīng)單細胞打印系統(tǒng)分選獲得的單克隆,后續(xù)產(chǎn)量>5g/L,約為隨機整合表達量的1.5-2倍,此流程可降低開發(fā)時間和成本,提升開發(fā)效能,大大縮短整個工藝開發(fā)及IND申報時間。
智能定點整合技術(shù)在單克隆細胞株篩選中具有高效、精確和安全等顯著優(yōu)勢,當(dāng)然其也面臨技術(shù)復(fù)雜、成本高以及潛在脫靶效應(yīng)等挑戰(zhàn),選擇使用SSI技術(shù)需綜合考慮實驗?zāi)康?、成本和技術(shù)能力等因素。
[1] Schmieder V , Fieder J , Drerup R ,et al.Towards maximum acceleration of monoclonal antibody development: Leveraging transposase-mediated cell line generation to enable GMP manufacturing within 3 months using a stable pool[J].Journal of Biotechnology, 2022(349-):349.DOI:10.1016/j.jbiotec.2022.03.010.
[2] A multi-landing pad DNA integration platform for mammalian cell engineering. Nucleic Acids Res.Gaidukov L, Wroblewska L, Teague B, Nelson T, Zhang X, Liu Y, Jagtap K etc.(2018)
[3]CHOK1SV GS-KO SSI expression system: A combination of the Fer1L4 locus and glutamine synthetase selection. Biotechnol Prog.Feary M, Moffat MA, Casperson GF, Allen MJ, Young RJ.(2021)
[4]Development of a targeted integration Chinese hamster ovary host directly targeting either one or two vectors simultaneously to a single locus using the Cre/Lox recombinase-mediated cassette exchange system. Biotechnol Prog. Ng D, Zhou M, Zhan D, Yip S, Ko P, Yim M, etc.(2021)
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