正常小鼠前脂肪細胞的培養(yǎng)
實驗材料:
1. 細胞來源:8—12天齡的小鼠;
2. 清洗液:不含Ca2+ 和Mg2+ 的1×PBS,添加200000IU/L青霉素、200mg/L鏈霉素,pH7.4;
3. 消化液:0.3%膠原酶溶液,含4%牛血清白蛋白。用Hanks液配制;
4. DW培養(yǎng)液:DMEM和WAJC404培養(yǎng)液按1:1(V/V)混合,添加100IU/ml青霉素、50µg/ml鏈霉素;人類正常細胞株
5. 培養(yǎng)液a:DW培養(yǎng)液,10%胎牛血清;
6. 培養(yǎng)液b:DW培養(yǎng)液,補充胰島素10µg/ml、轉(zhuǎn)鐵蛋白10µg/ml、成纖維細胞生長因子(FGF)10ng/ml和高密度脂蛋白(HDL)溶液5µl/ml;
7. 高密度脂蛋白(HDL)溶液:含蛋白質(zhì)18mg/ml和膽固醇10mg/ml;
8. 地塞米松:工作濃度為10 -7 mol/L;
9. 篩網(wǎng):孔徑分別為250µm與80µm的尼龍網(wǎng)篩;
實驗方法:
1. 取材;
① 取8—12天齡的小鼠,窒息處死后,置于冰塊上;
② 在無菌條件下迅速切取腹股溝的脂肪墊,放入PBS液中;
③ 清除脂肪墊中的大血管和結(jié)締組織,洗凈血污。稱取脂肪墊的重量;
2. 分離細胞;
① 將脂肪墊剪成1mm 3 左右的小塊,轉(zhuǎn)入50ml錐形離心管中;
② 每0.1g組織塊加入3—4ml消化液。在37℃水浴搖床上以60r/min的轉(zhuǎn)速輕微振蕩,消化1h。其間每隔10min取出離心管,搖動,使組織塊與消化液充分混勻;
③ 消化完后,用吸管反復吹打消化液,分散組織塊,制成細胞懸液;
④ 用孔徑為250µm的尼龍網(wǎng)篩過濾細胞懸液,除去未分散的組織塊,收集濾液。將濾過液再用孔徑為80µm的尼龍網(wǎng)篩過濾,除去大部分成熟脂肪細胞,收集濾液;
⑤ 將zui后得到的濾液離心(700g,7—10min)。吸棄漂浮的脂肪細胞和消化液;
⑥ 用培養(yǎng)液a清洗細胞,離心(700g,7min)。將細胞團制成懸液,再離心。zui后,將細胞沉淀用培養(yǎng)液a重新制成細胞懸液。
3. 原代培養(yǎng);
① 用培養(yǎng)液a調(diào)節(jié)細胞密度。將細胞以1.5×10 4個/cm 2 的密度接種于培養(yǎng)板中;
② 24h后,用DW培養(yǎng)液*清洗細胞,除去培養(yǎng)物中殘留的胎牛血清和未貼壁的細胞(主要為紅細胞);
③ 換入培養(yǎng)液b,在37℃、5%CO2 培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。以后用培養(yǎng)液b維持培養(yǎng)。每3d換液一次;
④ 在細胞匯合成片后,繼續(xù)培養(yǎng);或于細胞匯合成片后第五天,在培養(yǎng)液b中加入10 -7 mol/L地塞米松,繼續(xù)培養(yǎng);
⑤ 培養(yǎng)至出現(xiàn)漂浮細胞時,即可收貨細胞,進行鑒定。
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