細胞傳代培養(yǎng)(消化法)
1.預熱培養(yǎng)用液:把已經(jīng)配制好的裝有培養(yǎng)液、PBS液和胰蛋白酶的瓶子放入 37℃水浴鍋內(nèi)預熱。
2.用75%酒精擦拭經(jīng)過紫外線照射的超凈工作臺和雙手。
3.正確擺放使用的器械:保證足夠的操作空間,不僅便于操作而且可減少污染。
4.點燃酒精燈:注意火焰不能太小。
6.取出預熱好的培養(yǎng)用液:取出已經(jīng)預熱好的培養(yǎng)用液,用酒精棉球擦拭好后方能放入超凈臺內(nèi)。
8.打開瓶口:將各瓶口一一打開,同時要在酒精燈上燒口消毒。
二.胰蛋白酶消化;
1.加入消化液:小心吸出舊培養(yǎng)液,用PBS清洗(沖洗),加入適量消化液(胰蛋白酶液),注意消化液的量以蓋住細胞,*消化溫度是37℃。
2. 顯微鏡下觀察細胞:倒置顯微鏡下觀察消化細胞,若胞質(zhì)回縮,細胞之間不再連接成片,表明此時細胞消化適度。
3.吸棄消化液加入培養(yǎng)液:棄去胰蛋白酶液,注意更換吸管,加入新鮮的培養(yǎng)液。
三.吹打分散細胞:
1.吹打制懸:用滴管將已經(jīng)消化細胞吹打成細胞懸液。
2.吸細胞懸液入離心管:將細胞懸液吸入10ml離心管中。
3.平衡離心:平衡后將離心管放入臺式離心機中,以1000轉(zhuǎn)/分鐘離心6-8分鐘。
4.棄上清液,加入新培養(yǎng)液:棄去上清液,加入2ml培養(yǎng)液,用滴管輕輕吹打細胞制成細胞懸液。
四.分裝稀釋細胞:
1.分裝:將細胞懸液吸出分裝至2-3個培養(yǎng)瓶中,加入適量培養(yǎng)基旋緊瓶蓋。
2.顯微鏡下觀察細胞:倒置顯微鏡下觀察細胞量,必要是計數(shù)。注意密度過小會影響傳代細胞的生長,傳代細胞的密度應該不低于5×105/ml,zui后要做好標記。
五.繼續(xù)培養(yǎng):
用酒精棉球擦拭培養(yǎng)瓶,適當旋松瓶蓋,放入CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。傳代細胞2小時后開始貼附在瓶壁上。當生長細胞鋪展面積占培養(yǎng)瓶底面積25%時為一個+,占50%為++,占75%時為+++。
傳代細胞培養(yǎng)注意事項:
1.嚴格的無菌操作。
2.適度消化:消化的時間受消化液的種類、配制時間、加入培養(yǎng)瓶中的量等諸多因素的影響,消化過程中應該注意培養(yǎng)細胞形態(tài)的變化,一旦胞質(zhì)回縮,連接變松散,或有成片浮起的跡象就要立即終止消化。
附:EDTA(0.02%乙二胺四乙酸二鈉)消化液配方:
EDTA 0.20g,NaCl 8.00g, KCl 0.20g, KH2PO4 0.02g,葡萄糖 2.00g,0.5%酚紅4ml,加入蒸餾水定容至1000ml。10磅20min高壓滅菌,使用時調(diào)節(jié)PH值到7.4。注意EDTA不能被血清中和,使用后培養(yǎng)瓶要*清洗,否則再培養(yǎng)時細胞容易脫壁。
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