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          WB內(nèi)參選擇指南

          閱讀:351      發(fā)布時間:2024-10-17
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          1、什么是內(nèi)參?

          內(nèi)參是Western Blot實驗中用于標準化和校正實驗誤差的一類蛋白質(zhì)。它們通常是在不同組織和細胞中表達相對恒定的蛋白質(zhì),由管家基因編碼,常用作檢測目的蛋白表達水平變化時的參照物。

           

          2、內(nèi)參在WB中的作用是什么?

          校正實驗誤差:內(nèi)參用于校正蛋白質(zhì)定量和上樣過程中的實驗誤差,以保證實驗結(jié)果的準確性。由于不同的樣品在蛋白質(zhì)提取、定量、上樣等步驟中可能存在操作誤差,使用內(nèi)參可以對這些誤差進行校正。

          半定量分析:通過比較內(nèi)參和目標蛋白的信號強度,可以對實驗結(jié)果進行半定量分析。如果樣品蛋白量有限,只夠進行一次電泳轉(zhuǎn)膜實驗時,分別檢測樣品的內(nèi)參量和目的蛋白量,然后將各樣品目的蛋白量分別除以其內(nèi)參含量,得到內(nèi)參校正后的各樣品中目的蛋白相對含量,用此數(shù)值進行樣品間的比較和分析。

          作為空白對照:內(nèi)參可以作為空白對照,檢測蛋白轉(zhuǎn)膜情況是否wan全,以及整個Western Blot顯色或者發(fā)光體系是否正常。

          確保實驗結(jié)果的可比性:在比較不同條件下或不同組織中目的蛋白表達量的相對多少時,內(nèi)參提供了一個參照標準,確保了實驗結(jié)果的可比性。

           

          3、常見的WB內(nèi)參有哪些?

          β-Actin:β-肌動蛋白是一種細胞骨架蛋白,分子量42KDa左右,廣泛分布于各種組織中,表達量豐富且相對恒定。它通常用作總蛋白的內(nèi)參,尤其是在非肌肉組織中。然而,需要注意的是,β-Actin在某些特定組織(如心?。┲械谋磉_量可能較低,因此并非在所有情況下都適用。此外,不同的β-Actin亞型在不同組織中的分布也有所不同,選擇抗體時需考慮這一點。

           

          大鼠腦裂解物20μg 

           

          人結(jié)腸癌組織

           

          Hela細胞 

           

          abs171598 Rabbit anti-β-Actin Monoclonal Antibody

           

          GAPDH(甘油醛-3-磷酸脫氫酶):36kD左右,GAPDH是一種廣泛表達的蛋白,適用于多種細胞類型。然而,在某些條件下,如缺氧或糖尿病,GAPDH的表達可能會受到影響,因此需要根據(jù)實驗條件謹慎選擇。

           

          1: HeLa whole cell lysate 20ug Lane

          2: THP-1 whole cell lysate 20ug Lane

           3: MCF7 whole cell lysate 20ug Lane

          4: NIH/3T3 whole cell lysate 20ug Lane

          5: mouse spleen lysate 20ug Lane

           6: C6 whole cell lysate 20ug Lane

          7: rat spleen lysate 20ug 

           

          abs132004 Rabbit anti-GAPDH Polyclonal Antibody

           

          β-Tubulin:55kDa左右,β-Tubulin是微管蛋白的一種,參與構(gòu)成細胞骨架。由于其在細胞中的穩(wěn)定表達,尤其用于檢測細胞骨架蛋白時。β-Tubulin的表達在多種細胞類型中相對恒定,但同樣需要考慮特定條件下的表達變化,如在凋亡細胞中。

           

          Hela細胞全裂解物

           

          大鼠腎組織

           

          NIH3T3細胞

           

          abs171597 Rabbit anti-β-Tubulin Monoclonal Antibody

           

          除了以上介紹的內(nèi)參以外,還有α-Tubulin、Hsp90等等,每個內(nèi)參的分子量及適用情況不一樣,建議選擇之前做好功課。

           

          4、如何挑選合適的內(nèi)參,需要考慮哪些因素?

          目的蛋白分子量:內(nèi)參蛋白的分子量應(yīng)與目標蛋白的分子量相差至少5kDa以上,以確保在凝膠電泳和Western Blot中能夠清晰地區(qū)分目標蛋白和內(nèi)參的條帶。

          樣本種屬來源:不同種屬的樣本可能需要選擇不同的內(nèi)參蛋白。例如,哺乳動物的組織或細胞樣本常選擇β-actin、β-tubulin、GAPDH等,而植物樣本可能選擇plant actin、Rubisco等作為內(nèi)參。

          細胞定位:根據(jù)目標蛋白的亞細胞定位選擇相應(yīng)的內(nèi)參。例如,如果是檢測全細胞或細胞質(zhì)蛋白,可以選擇β-actin、β-tubulin、GAPDH等;如果是核蛋白,則可能選擇Lamin B、Histone H3等作為內(nèi)參。

          實驗環(huán)境:內(nèi)參的選擇還需要考慮實際的實驗環(huán)境和樣品的前處理。在某些特殊條件下,一些內(nèi)參蛋白的表達可能會發(fā)生變化,從而影響其作為內(nèi)參的穩(wěn)定性和可靠性。例如,在缺氧或糖尿病等條件下,GAPDH的表達可能會增加,因此可能不適合作為內(nèi)參。

          組織特異性:不同的組織可能需要選擇不同的內(nèi)參。例如,肌肉組織中可能需要選擇特定的肌動蛋白亞型作為內(nèi)參,而在非肌肉組織中則可能選擇β-actin等。

           

          5、內(nèi)參抗體和目標抗體如何孵育?

          順序孵育:在檢測完目標蛋白后,使用strip緩沖液洗掉膜上的抗體,然后重新進行內(nèi)參蛋白的抗體溫育和顯色檢測。這種方法需要在兩次孵育過程中使用同一張膜。

          雙膜法:在蛋白轉(zhuǎn)膜后,根據(jù)預染的蛋白質(zhì)Marker的大小將膜剪成大分子量和小分子量兩部分,使內(nèi)參蛋白與目的蛋白分開。然后兩塊膜分別與內(nèi)參蛋白抗體以及目的蛋白抗體進行孵育和顯色。

          同時孵育(如果分子量相差較大):如果目的蛋白的分子量與內(nèi)參蛋白的分子量相差較大,可以在轉(zhuǎn)膜后的同一張膜上同時進行兩種抗體的孵育。由于條帶位置的差異,可以在同一張膜上分別檢測內(nèi)參和目標蛋白。

          使用標記內(nèi)參抗體:有些實驗室使用預先標記有酶(如HRP)的內(nèi)參抗體,這樣可以在二抗孵育時加入這種標記內(nèi)參抗體,按照正常操作進行顯色。

           

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